Методические указания для обучающихся специальности СПО 36.02.01. «Ветеринария» выполнению лабораторно практических занятий по учебной дисциплине Болезни мелких животных
учебно-методический материал

Департамент внутренней и кадровой политики Белгородской области

ОГАПОУ «Бирючанский техникум»

Методические указания

для обучающихся специальности СПО 36.02.01. «Ветеринария»

выполнению лабораторно практических занятий

по учебной дисциплине Болезни мелких животных

2018 г.

Организация-разработчик: ОГАПОУ «Бирючанский техникум»

Разработчик: Н.А. Чечель, преподаватель ветеринарных дисциплин ОГАПОУ «Бирючанский техникум»

РАССМОТРЕН                                                      УТВЕРЖДАЮ

на заседании                                                             Заместитель директора

ПЦК зооветеринарных дисциплин и                     ________ / Черемушкина Т.Б.

садово-паркового и ландшафтного                       «____» _______ 2018 г.

строительства                                                                    

протокол №   от «___» __________ 2018  г.                            

Председатель ПЦК __________ Чмулева О.В.

Содержание

  стр.

Введение…………………………………………………………………………...4

Правила  выполнения лабораторно практических работ……………………….5

Техника безопасности при выполнении лабораторно

практических  работ……………………………………………………………....6

1.1. Перечень тем практических работ по учебной дисциплине Болезни мелких животных………………………………....................................................7

Основная часть. План проведения практической работы……………………...8

Рекомендуемая литература……………………………………………………...39

Введение

Методические рекомендации по выполнению практических работ составлены согласно учебной программы в соответствии с ФГОС специальности  СПО 36.02.01. «Ветеринария».

В результате освоения  обучающийся должен уметь:

• - владеть диагностическими приемами при различной патологии;
• - применять нетрадиционные методы лечения;
• -исследовать пчелосемьи на бактериальные, паразитарные заболевания;
• - проводить обработку пчелосемей в неблагополучных хозяйствах;
• - проводить дегельминтизацию собак, кошек, пушных зверей;
• - владеть оперативной техникой при оказании хирургической помощи;

знать:

правила ухода, кормления и содержания непродуктивных животных;

- основные симптомы болезней;

- основы профилактики и лечения болезней мелких животных.

Правила выполнения практических работ

Лаборатория должна быть оснащена действующим оборудованием, необходимым инструментом. Рядом с оборудованием должны быть вывешены правила работы и техники безопасности.

Практические работы рассчитаны на двухчасовые и шестичасовые занятия.

Для успешного выполнения практических работ обучающиеся должны предварительно прослушать соответствующий теоретический материал. Перед началом каждого занятия преподаватель путем фронтального опроса или другим методом проверяет степень подготовленности обучающихся к практическому занятию.

Преподаватель должен следить за выполнением работ, отвечать на вопросы обучающихся, помогать им, не подавляя их инициативы и самостоятельности. Посещаемость занятий и оценка знаний обучающихся ведется в журнале теоретического обучения.

После выполнения практической работы преподаватель должен проверить состояние оборудования и рабочих мест.

Техника безопасности при выполнении

практических работ

Преподаватель обязан обеспечить полную безопасность обучающихся во время практических занятий. Все это требует строжайшего соблюдения правил техники безопасности при работе с оборудованием, инструментами, животными. Нарушение этих правил, небрежное обращение с оборудованием, реактивами могут привести к травмам, и другим несчастным случаям. Обеспечение полной безопасности во время практических занятий зависит от организованности и порядка, от того, насколько прочно обучающиеся усвоили требования техники безопасности.

В целях лучшей организации охраны труда и создания безопасных условий необходимо предусмотреть целую систему мероприятий, а именно:

1. обеспечение в кабинете (лаборатории) условий в соответствии с действующими Правилами техники безопасности  и производственной санитарии для учебных кабинетов, лаборатории;
2. тщательную подготовку оборудования к проведению практических занятий;
3. разъяснение обучающимся правил техники безопасности во время вводного и текущего инструктажа;
4. контроль над соблюдением обучающимися всех требований техники безопасности во время практических  работ.

1.1. Перечень тем практических работ по учебной дисциплине

Болезни мелких животных

Форма организации обучающихся на занятиях является - индивидуальная, групповая, коллективная.

Основная часть

План проведения практической работы

Практическое занятие № 1, 2.

Тема: Техника выполнения клинических исследований.

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить клинические исследования животных.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, термометры, плессиметр, перкуссионный молоточек, фонендоскоп.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с животными.

Ход работы:

1. Особенности клинического обследования больных собак и кошек

Осмотр - доступный метод объективного исследования, позволяющий не только выявить больное животное, но иногда определить и характер болезни (закупорка пищевода, паралич тазовых конечностей, выпадение влагалища, и др.). Осматривают животное при дневном свете или при хорошем искусственном освещении и в определенной последовательности: начинают с головы, шеи, грудной клетки, живота и подвздоха, вымени, мошонки и препуция, таза и заканчивают конечностями. Определяют общее состояние животного, положение тела в пространстве, упитанность и телосложение, состояние волосяного покрова и кожи, обращают внимание на истечения из носа, глаз, влагалища и др.

Пальпация - метод исследования осязанием при легком и мягком движении рук. Она дает представление о состоянии исследуемых органов и тканей, и, прежде всего о характере их поверхности, температуре, консистенции, форме, величине и чувствительности. Пальпацией определяют качество пульса и распознают происходящие изменения. Различают поверхностную, глубокую и внутреннюю пальпацию. Поверхностную пальпацию используют для определения силы сердечного толчка, температуры кожи, болевой реакции. Глубокая пальпация заключается в ощупывании тканей и органов концами пальцев путем постепенно увеличивающейся силы давления. Этот вид пальпации используют при исследовании органов, расположенных в брюшной полости (желудок, кишечник, печень, селезенка, мочевой пузырь), а также при установлении беременности.

К разновидностям глубокой пальпации относятся скользящая, проникающая, бимануальная и толчкообразная. Скользящую пальпацию используют для исследования органов в глубине брюшной и тазовой полостей. Проникающую пальпацию проводят путем значительного давления пальцами руки на брюшную стенку (например, при исследовании печени). Бимануальную пальпацию рекомендуется использовать для определения величины внутреннего органа или опухоли обеими руками с обеих сторон.

Перкуссия - метод исследования, проводимый путем выстукивания какой-либо части тела с цепью вызвать колебательные движения ее. По характеру возникающего при этом звука делают заключение об изменениях в органах или полости. Перкуссию проводят в небольшом закрытом помещении, в котором звук в силу резонанса получается более четким, ясным и акцентированным, пои отсутствии посторонних шумов. Степень воздушности или плотности исследуемого органа и обусловливает определенную гамму звуков, получающихся при перкуссии.

Различают непосредственную и посредственную перкуссии. Первая заключается в том, что одним или двумя пальцами руки, сложенными вместе и слегка согнутыми, наносят короткий удар по исследуемой части тела. Посредственная перкуссия по технике исполнения делится на дигитальную и инструментальную. Первую производят ударом пальца по пальцу на соответствующей части тела. Для инструментальной перкуссии требуются перкуссионный молоточек и плессиметр.

По технике выполнения различают перкуссию стаккато и легато. Первая характеризуется отрывистыми, короткими, но сильными ударами молотка и применяется для выявления патологических изменений в органах. Перкуссия легато, напротив, проводится медленными движениями руки, с задержкой перкуссионного молоточка на плессиметре и чаще используется для топографических исследований. Топографическая перкуссия позволяет разграничить тупой перкуторный звук (абсолютная тупость) от притупленного (относительная тупость). В практических целях топографической перкуссией пользуются для установления границ легких, сердца, печени и селезенки.

При перкуссии ухо врача должно находиться на одном уровне с плессиметром. Собак и кошек при исследовании лучше ставить на стол.

Аускультация - метод исследования животных выслушиванием. В клинической практике используют аускультацию непосредственную (прикладывание уха на исследуемую часть тела через полотенце) и посредственную (выслушивание через стетоскопы или фонендоскопы). У животных аускультацию широко применяют при диагностике болезней сердечно-сосудистой, дыхательной и пищеварительной систем.

Так, при аускультации сердца в норме слышны первый и второй его тоны, тогда как при патологических изменениях возникают эндокардиальные и перикардиальные шумы.

В дыхательной системе в норме улавливают два шума: везикулярный и бронхиальный. При патологии появляются дополнительные шумы (хрипы, плеск, шумы трения и др.). Аускультацию лучше производить в закрытом помещении и при полной тишине.

Термометрия - один из обязательных методов клинического исследования животных. Температуру тела у собак и кошек измеряют в прямой кишке ртутным или электронным термометром. Показатели термометрии позволяют следить за ходом болезни и результатами лечения, а при многих инфекционных болезнях термометрия используется как метод раннего выявления заболевших животных, сопоставляя с физиологическимиколебаниями у животных данного вида.

Специальные методы исследования дополняют описанные выше способы диагностики и нередко позволяют не только уточнить диагноз, но и углубить понимание патологического процесса. Арсенал инструментальных и лабораторных методов исследования значительно увеличивается, а исследования больных животных становятся полнее и сложнее. Одни из них имеют общее значение (рентгенологический метод), другие (электрокардиография, измерение кровяного давления, зондирование желудка, эзофагогастроскопия, катетеризация и др.) применяют для исследования только одной системы. Все большее диагностическое значение для распознавания болезней животных приобретают биохимические, микроскопические, бактериологические и др. методы.

Основные физиологические показатели собак и кошек

Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1. На что обращают внимание при осмотре животных?
2. Диагностическое значение перкуссии.
3. Виды и цели аускультации.
4. Клиническое значение метода пальпации.
5. Клиническое значение термометрии.

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 3.

Тема: Техника выполнения фиксации. Средства фиксации

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить фиксацию животных, знать средства фиксации

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, тесемочная петля.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с животными.

Ход работы:

1. Собаки обычно становятся доступны после спокойного разговора с ними. Тогда протягивают руку к животному, спокойно поглаживают его по спине, затем по шее в направлении к голове. Если это не вызывает агрессивного ответа, то врач удерживает собаку за шею и голову руками. В это время ассистент завязывает морду тесьмой, образуя петлю, при этом, чтобы избежать ослабления петли и возможности разжать челюсти, петлю обязательно завязывают узлом сначала сверху на переносице, затем внизу под нижней челюстью и уже потом за ушами. Нельзя полагаться на заверения владельца, что собака не кусается. Собака в клинике ведет себя спокойнее и лучше воспринимает команды, если на нее надет ошейник. Ошейник собаке служит сигналом четкого выполнения команд.

На стол для обследования собаку поднимают, захватив одной рукой за шкирку, а другой - под живот. Маленьких собак второй рукой обычно подхватывают под грудину. Нельзя поднимать их за передние лапы, так как при этом возможно растяжение мышц плеча.

Если собака очень агрессивна, на шею ее, кроме ошейника, надевают веревочную петлю-удавку, с помощью которой притягивают к решетке клетки или батарее отопления. В это время ассистент берет собаку за хвост и тянет с силой в противоположную натяжению веревки сторону. Теперь голова и задняя часть тела собаки фиксированы и можно спокойно надеть стягивающую петлю на морду.

При невозможности выполнения каких-либо сложных манипуляций из-за чрезмерной подвижности животного (например, чау-чау) или при необходимости выполнить сложную болезненную процедуру целесообразно вначале ввести седативное (успокаивающее) средство, например 2 %-ный раствор рометара в дозе 0,1 мл/кг.

Для выполнения струйных внутривенных вливаний собаку обычно укладывают в боковое положение на столе. Безболезненное укладывание животного на бок выполняется в следующей последовательности: владелец обеими руками из-под живота захватывает конечности противоположной стороны животного и тянет их на себя, заваливая собаку. Ассистент в этот момент придерживает голову руками, чтобы собака не ударилась ею о стол. Затем ассистент обходит собаку со стороны спины, придавливает шею и живот, локтями рук, захватывая кистями нижележащие конечности, и так удерживает животное. Если планируется длительное внутривенное капельное вливание жидкости, то собаку привязывают к столу бечевками. Петли накладывают на запястье и заплюсну каждой конечности раздельно, а другим концом бечевки привязывают к столу, вытягивая ноги собаки в разные стороны. Дополнительно петлю, бечевки продевают под мышкой грудной конечности, лежащей сверху, натягивают ее в сторону спины и также привязывают к столу.

Способы фиксации кошек

Цель фиксации - укрепление всего тела кошки или его отдельных частей в определенном положении для исключения травм у человека и пациента при выполнении ветеринарной помощи.

При простых процедурах кошку берут одной рукой за кожу на шее у головы, а другой за кожу в области поясницы и прижимают к столу. В таком положении кошка может найти возможность поцарапать когтями, поэтому при сложных манипуляциях ее фиксируют два человека. Один человек держит кошку за загривок и за обе грудные конечности, а другой - за тазовые конечности. Кошек можно завернуть в полотенце или платок, оставив открытой лишь ту часть тела, которая нужна для процедуры. Если процедуру проводят на голове, то тело кошки помешают в узкий мешок или рукав ватной телогрейки, а голову оставляют снаружи. Для фиксации головы применяют также специальный ящик с выдвижной крышкой и вырезом в торцевой стенке для шеи.

Очень неспокойным кошкам целесообразно завязывать челюсти бинтом. Владелец сжимает руками челюсти животного. В это время другой человек, сзади и несколько сбоку набрасывает на челюсти петлю с обычным узлом из вдвое или втрое сложенного марлевого бинта. Узел должен быть внизу. Концы бинта прочно затягивают и завязывают на затылке двойным узлом. Для фиксации кошки в лежачем положении используют операционные столы для мелких животных и фиксационные доски с головодержателями.

Фиксацию разведенных челюстей у спокойных кошек можно провести без применения инструментов. Одной рукой захватывают верхнюю челюсть и вдавливают края щек в ротовую полость, другой рукой оттягивают нижнюю челюсть книзу и раскрывают рот. Щеки, находясь между зубами, препятствуют смыканию челюстей.

Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1. Методы наложения петли на морду собаке.
2. Метод повала собаки и фиксации руками на столе.
3. Метод фиксации собаки при установке капельницы.
4. Метод фиксации кошки при сложных манипуляциях.

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 4, 5

Тема: Техника введения лекарственных веществ. 

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: уметь вводить лекарственные вещества различными способами.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, шприцы, иглы, лекарственные вещества (жидкие, таблетки, болюсы), резиновая бутылка, шприцы, пистолета-таблеткодаватель, болюсодаватель, капсулодаватель, зонд, зевник, раствор йода, шприц Жанэ, кружка Эсмарха, катетер.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с препаратами, инструментами, животными.

Ход работы:

Методы введения лекарственных веществ. При лечении и профилактике внутренних незаразных болезней у животных применяют добровольные и насильственные методы введения лекарственных веществ.

Добровольные методы. Применение этих методов возможно при наличии аппетита у животных, отсутствии неприятного запаха и вкуса у назначаемых веществ.

Все виды минеральных, витаминных и других добавок вводят животным в основном с помощью добровольных методов. В большинстве случаев лекарственные вещества задают с наиболее хорошо поедаемыми кормами, для собак, кошек, кроликов, пушных зверей лекарства преимущественно смешивают с мясом, мясным фаршем и бульоном, творогом, колбасой и другими охотно поедаемыми кормами.

При добровольном методе используют следующие способы введения лекарственных веществ: индивидуальный - дача лекарственного вещества отдельно каждому животному, групповой одновременно многим животным. Навеску вещества, рассчитанную на определенное число животных, вводят в корм. Общую навеску лекарственного вещества перемешивают с кормом последовательно вначале с небольшим количеством, а затем постепенно со всей массой корма. Если объем навески лекарственного вещества или микродобавки слишком мал, то ее необходимо предварительно смешать с небольшим количеством крахмала, муки или комбикорма и после этого уже готовить смесь для скармливания животным. Благодаря этому возможно равномерное перемешивание с кормом взятого препарата. Приготовленную смесь дают животным индивидуально или группе, наблюдая за равномерным ее поеданием.

Насильственные методы. Лекарственные вещества вводят животным с использованием инструментов: через рот с помощью зонда и др., внутримышечно, подкожно, внутривенно, внутрибрюшинно, в прямую кишку, трахею.

Введение лекарственных веществ через рот (per os). Через рот вводят жидкие, твердые и другие формы лекарственных веществ. Для введения жидких форм (растворов, настоев, отваров и др.) используют бутылки, ложки, шприцы и другие приборы. Таблетки, болюсы, капсулы дают с помощью пистолета-таблеткодавателя, болюсодавателя, капсулодавателя и других инструментов.

Мелким животным жидкие лекарственные вещества можно вводить из стеклянной бутылки, надев на нее резиновую соску.

Жидкие лекарственные вещества с помощью ложки задают собакам, кошкам и другим мелким животным в стоячем положении, немного приподняв им голову. У собак и кошек шпателем или пальцами оттягивают щеку в области угла рта и в образовавшийся карман вливают лекарство. Мелким животным жидкость можно ввести из шприца с надетой на наконечник резиновой трубкой, спринцовки, прибора Малахова.

Таблетки, пилюли, порошки можно вводить в ротовую полость с помощью специальных инструментов или без них. Для введения таблеток используют пистолет-таблеткодаватель. Порошки мелким животным засыпают непосредственно в раскрытый рот.

Для зондирования собак используют большой или малый медицинский желудочный зонд, а также зевник. Собаку фиксируют в сидячем положении, в ротовую полость вставляют зевник и фиксируют его на голове. Подготовленный соответствующим образом зонд вставляют в отверстие зевника, продвигают до глотки и в момент глотательных движений вводят в пищевод, осторожно проталкивая его до желудка. Через свободный конец зонда шприцем отсасывают содержимое  или проводят другие манипуляции. Подобным образом зондируют желудок и у других плотоядных.

Введение лекарственных веществ парентерально. Способ введения путем инъекций и вливаний лекарственных веществ, минуя желудочно-кишечный тракт, при котором они быстрее оказывают лечебное действие и их легче дозировать. Многие лекарства вводят только парентерально, так как при попадании их в желудок они разрушаются под действием пищеварительных ферментов.

В ветеринарной практике применяют внутримышечные, подкожные, внутривенные, внутрибрюшинные, внутриартериальные и другие инъекции и вливания с помощью различных инъекционных и кровопускательных игл, специальных аппаратов, различных приспособлений.

Иглы состоят из заостренной трубки, запрессованной в латунную муфту (канюлю), и мандрена.

Для инъекций используют иглы разных размеров (№ 1060, 1090, 1230, 1530 и др.). Первые две цифры (номер) - показатель диаметра трубки в десятых долях миллиметра, последние две цифры - длина трубки в миллиметрах. Например, у иглы № 1230 диаметр 1,2 мм, длина 30 мм. Для взятия крови, внутрисосудистых и других инъекций используют иглы № 1545, 1555, 2030, 2032, 2040, 2055, 2070, иглу с пластиной № 2056 и др.

Шприцы для инъекций и вливаний: ветеринарный с бегунком (объем 1...20 мл), медицинский типа Рекорд (объем 2...20 мл), типа Жанэ, полуавтомат металлический ШМП-2, дозатор, шприцы одноразового использования и др.

Для подкожных внутривенных и внутрибрюшинных вливаний применяют аппарат Боброва. Для массовых обработок скота используют шприцы-полуавтоматы, кран трехходовой Агали, тройник-насадку и другие приспособления.

При парентеральном введении лекарственных веществ строго соблюдают правила асептики и антисептики: тщательно стерилизуют инструменты, правильно собирают шприцы и набирают в них лекарства, обрабатывают поле инъекции и т. д. Пренебрежение этими правилами может привести к перезаражению животных.

Перед инъекцией, вливанием или кровопусканием выстригают волосы на небольшом участке кожи, протирают его сухой ватой, затем смоченной спиртом, раствором йода или йодисола.

Подкожные инъекции (вливания). Подкожно вводят медикаменты, которые быстро всасываются, не вызывая сильного раздражения и некроза тканей. Их назначают обычно в тех случаях, когда необходимо ввести значительное количество лекарственного вещества. При подкожных введениях выбирают участки с богатой подкожной клетчаткой, где не проходят крупные сосуды и нервы.

У собак, кошек, пушных зверей - внутреннюю поверхность бедра, боковую поверхность шеи и грудной области; у птиц - грудную область, верхушку крыла.

Для этой цели большим и средним пальцами левой руки захватывают кожу и оттягивают ее; в получившейся складке указательным пальцем создают углубление. Шприц с иглой фиксируют правой рукой так, чтобы на муфте иглы находился мизинец, а указательный палец прижимал штифт поршня шприца. Иглу вкалывают коротким резким ударом в центре углубления под небольшим углом к поверхности кожи и убеждаются, что ее конец находится под кожей. Затем указательный палец передвигают на штифт поршня и, надавливая на него, вводят лекарство, после чего извлекают иглу. К месту вкола прикладывают вату, смоченную спиртом или раствором йодисола, слегка массажируют образовавшийся в подкожной клетчатке желвак. При подкожной инъекции нельзя вводить иглу слишком глубоко во избежание перелома ее в месте соединения с муфтой, так как обломок иглы можно извлечь только оперативным путем.

Нельзя допускать попадания под кожу, особенно в кровеносные сосуды, воздуха, вводить холодные растворы, набирать в один шприц несовместимые лекарства, например камфорное масло, раствор кофеина и другие сердечные препараты; масляные и водные, щелочные и кислотные растворы. Недопустимо смешивать рибофлавин с тиамином, пиридоксином, цианокобаламином, а последний - с тиамином, рибофлавином, пиридоксином, никотинамидом, аскорбиновой кислотой; экстракт алоэ несовместим со всеми другими препаратами. Противопоказано вводить подкожно взвеси, так как они плохо рассасываются, а также гипертонические растворы, способные вызвать инфильтрацию и даже некроз ткани.

Для введения больших количеств жидкости используют аппарат Боброва или шприц Жанэ. Раствор вводят в разные места тела, но не более 200...300 мл.

Внутримышечные инъекции. Внутримышечно вводят обычно медленно всасывающиеся лекарственные растворы и взвеси, так как в мышечной ткани больше сосудов, чем в подкожной клетчатке, а сокращение мышц способствует более ускоренному их всасыванию. Мышцы менее чувствительны, чем кожа, поэтому в них можно вводить те лекарства, которые при подкожной инъекции оказывают раздражающее действие (магния сульфат, лечебная сыворотка и др.). Внутримышечные инъекции менее болезненны, чем подкожные. Растворы вводят в места с наиболее развитыми мышцами (ягодичная область, внутренняя поверхность бедра и др.); у свиней инъекцию делают на внутренней поверхности бедра, а также в области основания ушной раковины. Крупным животным иглу вводят резким ударом на глубину 4...5 см (не более чем на две трети длины иглы). В большинстве случаев животных фиксируют. Для инъекций часто применяют удлинители - резиновые шланги, кран Агали, тройники-насадки. Необходимо избегать попадания иглы в кровеносный сосуд.

Внутривенные инъекции (вливания). Лекарственные вещества, введенные внутривенно, быстрее оказывают лечебный эффект на организм. Внутривенно вводят гипертонические растворы, которые нельзя инъецировать под кожу и внутримышечно, но недопустимо инъецировать гипотонические растворы, так как они вызывают гемолиз эритроцитов. Собакам, кошкам, кроликам, пушным зверям - в латеральную подкожную вену (латеральная вена сафена) или в подкожную вену предплечья.

Небольшие объемы раствора вводят в вену через инъекционную иглу из шприца, а большие - с использованием кровобрательных игл, цилиндра от шприца Жанэ или аппарата Боброва. Большие объемы жидкостей внутривенно, подкожно или внутрибрюшинно вводят капельным методом.

Существуют и другие методы внутривенного введения, но во всех случаях избегают попадания в сосуд воздуха, что может привести к воздушной эмболии и гибели животного; не допускают вливания гипертонических растворов кальция хлорида, натрия хлорида, глюкозы и других не в вену, а в окружающие ткани, что вызывает воспаление и некроз. Часто на месте кровоизлияния при проколе вены развиваются флебит и тромбофлебит.

Собак при введении лекарственных веществ в подкожную вену голени фиксируют в боковом положении, помощник прижимает сосуд в верхней трети голени, а оператор вводит иглу в вену под острым углом и присоединяет шприц. Для контроля попадания иглы слегка оттягивают из шприца поршень и ждут появления крови. Убедившись, что игла находится в вене, можно вводить раствор. При инъекциях в подкожную вену предплечья сосуд пережимают немного выше локтевого сустава, далее выполняют манипуляции, как описано выше.

Внутрибрюшинные инъекции и вливания. Перитонеальные серозные оболочки обладают выраженной всасывающей способностью, поэтому нередко прибегают к внутрибрюшинным инъекциям, особенно при введении больших объемов растворов телятам, поросятам и другим мелким животным, у которых внутривенное введение затруднительно.

Щенят собак и пушных зверей приподнимают за задние конечности головой вниз; иглу вводят между последним и предпоследним сосками, отступив на 1 см от белой линии.

В трахею растворы лекарственных веществ можно ввести через зонд или иглу. Для этой цели используют желудочный зонд для собак или мягкую резиновую трубку. Перед введением зонд дезинфицируют и смазывают вазелином. Подготовленный зонд вводят через носовую полость до глотки и в перерывах между глотательными движениями продвигают его дальше в трахею. При правильном введении зонда в трахею у животного появляется кашель, который вскоре исчезает, из конца зонда ощущается струя выдыхаемого воздуха.

При введении растворов через иглу в области трахеи ближе к грудной стенке волосяной покров выстригают и дезинфицируют, стерильную иглу вводят между кольцами в трахею. Лекарственное вещество вводят через шприц в лежачем положении животного в левое или правое легкое. Его можно вводить в трахею и в стоячем положении животного. Перед вливанием раствора лекарственного средства через зонд или иглу желательно в трахею ввести 3...5 мл 0,5 %-го раствора новокаина.

Кровопускание. Процедура эффективна при острых отравлениях, особенно мочевиной, гемолитическими и метгемоглобинобразующими ядами, при гиперемии и отеке головного мозга и легких, солнечном и тепловом ударах, гипертермии. Благодаря кровопусканию снижается артериальное давление, уменьшается концентрация в крови и тканях ядов, восстанавливается функция головного мозга, облегчается работа сердца, легких и других органов. Противопоказаниями служат анемии, желтуха, болезни крови.

Кровь у собак - из подкожной вены предплечья или латеральной вены сафена.

При кровопускании необходимо использовать иглы большого диаметра. Объем выпускаемой крови зависит от состояния больного животного. С лечебной целью можно выпустить около 1...2 % крови относительно массы тела животного, но обычно ограничиваются у собак 300 мл. Потеря 1/3 массы крови опасна для жизни животного, а 1/2 - смертельна. После кровопускания в вену рекомендуется ввести 4...5 %-й раствор глюкозы или 0,85 %-й раствор натрия хлорида в количествах, близких к массе выпущенной крови. Повторное кровопускание возможно не ранее чем через 2 сут.

Клизмы. Клизмой называется введение в толстый кишечник через задний проход различных жидкостей. Чаще их назначают с целью удаления содержимого прямой кишки - очистительная или послабляющая клизма или введения какого-либо лекарственного вещества - лекарственная и питательная клизмы.

Очистительные клизмы делают при запорах и задержании каловых масс, отравлениях, а также перед постановкой других видов клизм. Вода должна быть индифферентной температуры или теплой (37...39 0С), так как холодная может вызвать спазм кишечника. При атонических запорах температура воды может быть 20 0С, при спастических запорах - 37...42 0С. Для усиления действия клизмы в воде растворяют мыло, добавляют глицерин или растительное масло. За один прием собаке вводят до 1 л воды. Воду и лекарственные растворы вводят в прямую кишку из кружки Эсмарха, подвешенного ведра с резиновым шлангом и наконечником или из спринцовки.

Для послабляющих клизм используют растительное масло, 2...3 %-й раствор слабительной соли (натрия сульфат, магния сульфат). Подогретое до 37...38 0С масло вводят в прямую кишку медленно из шприца типа Жанэ или грушевидным баллоном (спринцовкой): 50...300 мл. На шприц или баллон надевают резиновую трубку нужного диаметра. После введения масла или раствора средних солей анус на некоторое время зажимают корнем хвоста.

Лекарственные клизмы делают для введения в прямую кишку лекарственных средств преимущественно местного (противовоспалительные, противоспазматические) или общего действия. Лекарственный раствор вводят подогретым до температуры тела, медленно, в небольшом количестве (микроклизмы), а чтобы он невылился из прямой кишки наружу, анальное отверстие зажимают корнем хвоста на 10.. Л 5 мин. Перед введением лекарства необходимо очистить прямую кишку. Мелким животным лекарства в прямую кишку можно вводить капельным методом (капельная клизма) из расчета 50... 100 капель в минуту.

В качестве лекарственных средств в прямую кишку можно вводить растворы перманганата калия (1:1000), гидрокарбоната натрия (2...4 %), хлоралогидрата (5 %) на слизистом отваре, фурацилина (1:5000) и др.

Питательная   клизма. При заболеваниях ротовой и носовой полостей, невозможности использовать желудочный зонд иногда прибегают к введению через прямую кишку питательных веществ: 5...10 %-го раствора глюкозы, рисовых и овсяных отваров, пептона в физиологическом растворе (1:10), раствора аминокислот и др. Перед питательной клизмой прямую кишку освобождают от каловых масс. Крупным животным можно ввести до 1 ...2 л питательного раствора. В сутки делают 2...3 питательные клизмы.

Катетеризация уретры и мочевого пузыря. Катетеризацию - введение катетера в уретру и мочевой пузырь - назначают с целью удаления мочи из мочевого пузыря при парезе, для его промывания, взятия проб мочи и в других случаях. Для этого используют эластичный мягкий для собак и др.

Катетеризацию уретры и мочевого пузыря проводят только при крайней необходимости с соблюдением всех правил асептики и антисептики. Катетеры стерилизуют кипячением или погружением в дезинфицирующий раствор; перед введением их смазывают стерильным вазелиновым маслом. Наружное отверстие уретры обрабатывают слабым дезинфицирующим раствором.

Катетеризация у собак. Самцов фиксируют в спинном или боковом положении с несколько приподнятым задом. Пенис берут сзади опухолевидных узлов, выводят его из препуция и обрабатывают дезинфицирующим раствором. Правой рукой осторожно вводят мягкий катетер диаметром 2...4 мм и длиной 30...45 см. Катетеризацию у самок проводят в боковом положении, используя тонкие мягкие катетеры длиной 10... 15 см.

Противопоказаниями к проведению катетеризации служат воспаление мочеиспускательного канала, отсутствие мочи в мочевом пузыре.

Мочевой пузырь промывают после попадания в него катетера и освобождения от мочи. Затем вводят до 250 мл раствора лекарственного вещества для лошадей и крупного рогатого скота, не более 50 мл для мелких животных. Удаляют раствор из мочевого пузыря с помощью шприца Жанэ. Процедуру повторяют до тех пор, пока не будет вытекать чистый раствор. Мочевой пузырь промывают обычно при воспалении.

Ингаляция (лат. ingalatum - вдыхать) - введение в органы дыхания каких-либо газообразных веществ или аэрозолей с током вдыхаемого воздуха. Ингаляцию назначают для улучшения бронхиальной проходимости, разжижения слизи, стимуляции функции мерцательного эпителия, уничтожения микрофлоры, при подострых и хронических ринитах, ларингитах, трахеитах, бронхитах, бронхопневмониях. Противопоказаниями служат: отек легких, острая сердечная недостаточность, острые формы воспалений дыхательных путей и легких с выраженной одышкой. Для ингаляции мелких животных используют специальные медицинские ингаляторы.

Температура вдыхаемого пара не должна превышать 45...50 0С, продолжительность процедуры не более 15...20 мин; курс лечения 1... 10 сеансов.

Данный метод лечения в настоящее время применяется редко и заменен аэрозольтерапией.

Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.Как вводят животным жидкие лекарственные вещества?

2.Внутрикожное введение лекарственного вещества?

3.Внутревенное введение лекарственного вещества?

4.Внутримышечное введение лекарственного вещества?

5.Как проводят и с какой целью клизмы?

6.С какой целью проводят зондирование животным?

7.Как и с какой целью проводят катетеризацию животных?

8.Внутритрахиальное введение лекарственного вещества?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.
2. Стрельников А. А. Кормление и болезни собак и кошек: справочник. Учебники для вузов. Специальная литература. -  СПб.: Издательство «Лань», 2005. – 608 с.

Практическое занятие № 6.

Тема: Техника купирования ушей у собак.

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить купирование ушей у собак.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, хирургические инструменты, раствор йода, вата, собака, 2,5%-ный аминазин, 2%-ный промедол; 1%-ный димедрол, 0,5%-ный новокаин, зажим, бритва, марлевые салфетки, мазь Вишневского, ватно-марлевая подушка, бинтовая повязка, шовный материал, иглы, иглодержатель.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с инструментами, животными.

Ход работы:

1.Ампутация ушных раковин

Операцию выполняют у собак с косметической целью или при новообразованиях, язвах, некрозах, ранениях. Длинную и острую форму ушной раковины со слегка выпуклым задненаружным краем придают догам, боксерам, ризеншнауцерам; относительно длинную с ровным задненаружным краем - доберманам, короткую и острую с ровным задненаружным краем - терьерам. У крупных пород собак косметическую ампутацию производят в возрасте 8-12 недель, у мелких (пинчер, терьер) - 5-6 недель.

Оперируют животных под потенцированным обезболиванием; внутримышечно вводят литическую смесь (2,5%-ного аминазина - 1 мл, 2%-ного промедола - 0,5 мл; 1%-ного димедрола - 0,5 мл), местно подкожно по линии намечаемого разреза делают инъекцию 0,5%-ного новокаина в дозе 15-20 мл. Операционное поле выбривают и двукратно смазывают 5%-ным раствором йода. На ушную раковину накладывают соответствующий зажим. У основания раковины он должен лежать ниже кармашка, а вверху - на границе средней и верхней трети. По наружной поверхности зажима острым скальпелем проводят одномоментное отрезание ушной раковины. Ампутированный лоскут используют в качестве шаблона для другого уха.

Рану зашивают узловатым швом не прокалывая хряща. По линии швов накладывают марлевые салфетки с эмульсией синтомицина, стрептоцида или мазью Вишневского. Уши укладывают на затылок, подложив ватно-марлевую подушку, и фиксируют бинтовой или пращевидной повязкой. Последнюю держат 3-4 дня, после чего снимают и при нормальном заживлении повторно не накладывают. Швы следует удалять на 7-8-й день.

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.С какой целью проводят купирование ушей у собак?

2.В каком возрасте проводят купирование ушей у собак?

3.Что необходимо помнить и выполнять перед проведением операции?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 7.

Тема: Техника ампутации хвостов у собак.

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить ампутацию хвостов у собак.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, собака, хирургические инструменты, раствор йода, тесемчатый жгут, иглы, иглодержатель, шовный материал.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с инструментами, животными.

Ход работы:

1.Ампутация хвоста

Выполняют как косметическую операцию у некоторых пород собак (боксеры, доберман-пинчеры, спаниели, фокстерьеры и др.) или при размозженных травмах, новообразованиях и других поражениях хвоста.

Ампутацию хвоста с косметической целью выполняют на 6-10-й день после рождения. Длина хвоста определяется соответствующими требованиями стандарта для отдельных пород.

Для операции помощник фиксирует щенка руками в спинном положении. Операционное поле следует выбрить и дважды смазать раствором йода. Обезболивание - циркулярная анестезия. На корень хвоста накладывают из марли тесемчатый жгут, зафиксировав его одним узлом. В намеченном месте сдвигают кожу к корню хвоста и циркулярным разрезом отделяют хвост между соответствующими позвонками. Рану зашивают мелкогофрированным кисетным швом. Культю слегка прижигают раствором йода. Снимать шов не обязательно.

Стандарты длины хвоста у некоторых пород после ампутации: Боксер, Доберман-пинчер, Фокстерьер, Спаниель, Пудель - длина оставленного хвоста 2-3 позвонка (только для прикрытия ануса) 2-3 позвонка 1/3 длины хвоста 2/5-1/2 длины хвоста 1/2-2/3 длины хвоста.

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.С какой целью проводят ампутацию хвостов?

2.В каком возрасте проводят ампутацию хвостов?

3.Что необходимо помнить перед проведением операции?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 8, 9.

Тема: Техника выполнения кастрации  самцов

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить кастрацию самцов.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, хирургические инструменты, раствор йода, лигатура.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с инструментами, животными.

Ход работы:

1. Кастрация кобелей

Открытый способ

1.Операционное поле, включая мошонку, выбривают, проявляя осторожность при обработке кожи мошонки.

2.Собаку переносят на стол, укладывают в положение на спине и подготавливают операционное поле.

3.Стенку мошонки захватывают над семенником, смещая его по средней линии краниально к основанию мошонки.

4.Зафиксировав семенник в указанном положении, рассекают кожу мошонки по среднему ее шву.

5.Рассекают влагалищную оболочку и, надавливая позади семенника, извлекают его из влагалищного мешка.

6.Разделяют брыжейку семенника, от его каудального полюса отделяют переходную связку.

7.Семяпровод и сосуды семенного канатика лигируют и рассекают (техника с наложением трех зажимов); как правило, их лигируют совместно, накладывая одну или две лигатуры.

8.Для предотвращения грыжеобразования влагалищную оболочку стягивают швами, так чтобы могла произойти облитерация полости влагалищного мешка.

9.Второй семенник удаляют аналогичным образом через имеющийся надрез.

10.Подкожные ткани и кожу закрывают обычным способом.

Закрытый способ

Начальные этапы операции аналогичны действиям при открытом способе кастрации:

1.Рассекают кожу мошонки по среднему шву, не вскрывая влагалищную оболочку.

2.Сильным нажатием на семенник выводят влагалищный мешок через разрез.

3.Влагалищный мешок захватывают и вытягивают в каудальном направлении, извлекая из полости все содержимое мошонки; процедуру удобнее проводить после разделения фасций с помощью тампона.

4.Влагалищный мешок должен быть, выведен так, чтоб открывался доступ к семенному канатику.

5.Участок семенного канатика освобождают от внешних фасций и лигируют рассасывающимся шовным материалом через поднимающую мышцу (m. cremaster), после чего на семенной канатик накладывают вторую лигатуру.

6.Рекомендуется наложение 2 или 3 гемостатических зажимов, однако часто этим требованием пренебрегают.

7.На семенной канатик дистально от лигатуры накладывают зажим, затем канатик рассекают между зажимом и лигатурой. В ходе процедуры проксимальный участок канатика захватывают атравматичным зажимом, для того чтобы после рассечения осмотреть его на наличие геморрагии. При проведении осмотра необходимо избегать натяжения канатика; в случае кровотечения накладывают дополнительную лигатуру.

8.После лигирования семенной канатик освобождают, позволяя ему втянуться в разрез по направлению к паховому кольцу.

9.Кастрацию завершают тем, что подводят второй семенник к разрезу, раздвигают покрывающие фасции и повторяют описанную процедуру.

10.Подкожные ткани и кожу закрывают обычным способом.

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.С какой целью проводят кастрацию самцов?

2.В каком возрасте проводят кастрацию самцов?

3.Что необходимо помнить перед проведением операции?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 10

Тема: Техника выполнения стерилизации самок.

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить стерилизации самок.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, хирургические инструменты, раствор йода, 5 % раствор кетамина и аминазина, 0,5 % раствор новокаина, тесьма, станок, лигатура, шовный материал, иглы, 4 % раствор гентамицина сульфат.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с инструментами, животными.

Ход работы:

1. Показание проведение операции

Показаниями к проведению стерилизации кошек и сук в нашем случае служили нежелание хозяев иметь потомство, стремление избежать неординарной поведенческой реакции самок и нежелательных физиологических изменений в их организме. В определенные стадии полового цикла, а также различного рода патологические состояния половой сферы (чаще пиометра и дистоция).

Подготовка животного к операции

Подготовка животного к операции включает в себя выдерживание его в течение 12-24 часов на голодной диете, а такие проведение клинического исследования, заключающегося в определении функционального состояния сердечно-сосудистой системы, аппарата дыхания и измерении температуры тела.

Анестезия

Для анестезии кошек и сук применяем сочетанный наркоз. Для общей анестезии использовали смесь 5 % раствора кетамина с % раствором аминазина в соотношении 1:1. Доза препаратов собакам составляет 0,6 мл/кг, кошкам - 0,5 мл/кг массы, внутримышечно.

Кетамин вызывает быстрый наркотический эффект, в среднем через3-5 минут, при самостоятельной вентиляции легких. Анальгетический его эффект характеризуется недостаточной висцеральной активностью. Аминазии усиливает наркотическое действие кетамина. Средняя продолжительность наркоза составляет 30-40 минут. После пробуждения у животных в течение 6-8 часов сохраняется дезориентация. Для местного обезболивание, по линии разреза, применяем 0,5 % раствор новокаина в форме инфильтрационной анестезии, в дозе 5 мл.

Фиксация животного

Фиксация животных во всех случаях осуществляется при помощи хозяев. Так собакам во время введения наркотических средств надевают намордник или связывают челюсти тесьмой. Кошки фиксируются в этом случае силами самого хозяина. Для операции, как кошек, так и собак фиксируют либо в спинном, либо в боковом положении в зависимости от выбора оперативного доступа.

Для чего, при фиксации в спинном положении, животное кладем спиной на стол. Привязываем тазовые конечности к нему. Грудные конечности располагаем вдоль спины. Конец тесьмы правой конечности проводим под спиной и над левым предплечьем, а другую тесьму таким же образом проводим на противоположенную сторону. Натягивая тесьму конечности, прижимаем к туловищу и фиксируем. При фиксации в боковом положении, связанные задние конечности отводим назад, а грудные - вперед и фиксируем. Затем свободные концы тесьмы перебрасываем сверху животного и фиксируем их к столу.

Подготовка инструментов и шовного материала

После каждой операции инструменты тщательно моют. После чего их вылаживают на сетку стерилизатора и опускают в него спустя минуты после закипания в нем воды. Время стерилизации составляет 30минут с момента второго закипания. Аналогично стерилизуют шовный материал.

Подготовка операционного поля

Подготовку операционного поля начинаем с выстриганием шерстного покрова и бритья выстриженного участка. Причем во время бритья приглаживаем шерсть по краям выстриженного участка по направлению к периферии. Непосредственно дезинфицируя операционное поля производим по методу Филончикова - двукратной обработкой его 5 % спиртовой настойкой йода. Этот препарат хорошо растворяет кожное сало, и глубоко проникает в кожу, воздействуя на микроорганизмы, находящиеся как на поверхности, так и в толще ее. Настойку йода наносим на сухую кожу, так как в присутствии влаги он действует слабее. Для этого после бритья тщательно осушаем операционное поле ватно-марлевым тампоном. Первую обработку йодом делаем перед местным обезболиванием, вторую - непосредственно перед разрезом кожи. Обработку начинаем с центра операционного поля к периферии концентрическими кругами или параллельными полосами.

Подготовка рук хирурга

Поскольку руки ветеринарного врача постоянно соприкасаются с объектами, загрязненными микроорганизмами, то подготовка рук перед операцией имеет особо большое значение. 

Обработка рук хирурга состоит из двух этапов: 1) механической очистки; 2)обработки антисептическими веществами.

Для обработки рук нами использовался способ Оливкова. Суть, которого заключается в том, что руки моем горячей водой с мылом. После чего насухо вытираем полотенцем, обрабатываем тампонами, смоченными спиртовым раствором йода 1:3000, дополнительно подногтевые пространства и ногтевые ложа обрабатывают 5 % спиртовой настойкой йода.

Техника проведения операции

Оперативный доступ при стерилизации кошек и сук осуществляют двумя способами: 1) по белой линии живота на 4-5 см у кошек и 5-10 см у сук (в зависимости от вида стерилизации и величины самки), отступив у сук на 4-5 см каудально от предпоследней пары сосков, а у кошек - на 2-3 см впереди лонного сращения; 2) в левом подвздохе, на середине расстояния между маклаком и последним ребром, на 2 см ниже поперечнореберных отростков поясничных позвонков, по ходу волокон наружного брюшинного косого мускула.

В первом случае рассекаем кожу и подкожной клетчаткой с иссечением жировой ткани последней, поверхностную и глубокую фасции. Брюшину захватываем двумя пинцетами, подтягиваем ее в полость раны и осторожно надрезаем ножницами, а затем под контролем пальцев разрез ножницами расширяем на длину оперативной раны. При боковом брюшном доступе рассекаем кожу, подкожную клетчатку, поверхностную и желтую брюшные фасции. Наружную и внутреннюю косые и поперечную мышцы разъединяют черенком скальпеля по ходу волокон. Поперечную фасцию с брюшины вскрывают аналогично оперативному доступу по белой линии. Указательный палец вводим через раневое отверстие в брюшную полость и находим рог матки, после чего извлекаем его при помощи большого пальца. Дальнейший ход операции в зависимости от вида стерилизации имеет свои особенности.

Техника овариоэктомии с отщемленкем яичников

Перемещаясь, по рогу матки в краниальном направлении находим, яичник и натягиваем его к ране. После чего первый гемостатический пинцет накладываем на связку яичника, а второй подводим под него. И при неподвижном нижнем пинцете откручиваем яичник верхним пинцетом. Отщепление возможно и ногтями пальцев с предварительным наложением на основании яичника гомеостатического пинцета. Второй яичник находим, перемещая рог в обратном направлении и по второму рогу, поступая с ним аналогичным путем. Место отщепления яичников обрабатываем 1 спиртовой настойкой йода. Вправляем рога в брюшную полость.

Техника овариоэктомии с наложением лигатуры

Данный метод стерилизации отличается от предыдущего лишь техникой удаления яичников, При этом легируют подвешивающую связку с яичниковыми артериями и венами и верхушку рога матки с прилегающими сосудами, после чего отсекаем яичник. Обрабатываем культю настойкой йода, отсекаем нити лигатур и вправляем рог в брюшную полость, аналогично удаляют второй яичник.

Техника гистерэктомии и ампутации матки у здоровых животных.

После нахождения и извлечения рога матки у собак делаем окно в тканях широкой маточной связке и перевязываем рог и проходящие близ него кровеносные сосуды. Затем последовательно перевязываем оставшуюся часть широкой маточной связки в двух местах вдоль рога матки. Извлекаем второй рог и поступаем с ним аналогично. Рассекаем ткани между верхушкой рога и яичником выше лигатуры на 0,5 см, а также ткани широкой маточной связки между лигатурами. Затем налаживаем на тело матки две лигатуры, нижняя из которых должна быть прошивной, одновременно легируя сосуды этой области. Матку между лигатурами отрезаем, обрабатываем настойкой йода и ушиваем культю одной из нитей лигатуры. Повторно обрабатываем культю йодом и отрезаем нити лигатур. Вправляем ее в брюшную полость. У кошек операция отличается тем, что на сосуды широкой маточной связки сосуды не налаживаются, а матка ампутируется после легирования верхушки рога и тела матки.

Техника Овариогистерэктомии и ампутации матки и яичников у здоровых самок

Данная операция идентична по технике гистерэктомии и ампутации матки у здоровых самок. Отличие ее состоит лишь в том, что лигатура налаживается выше яичника, то есть на его подвешивающую связку и яичниковые артерии.

Техника перевязки маточных труб

Маточную трубу расправляем, выбирая бессосудистый участок мозосальпинкса. Затем иглой с лигатурой прокалываем последний и производим перевязку сначала с одной; а затем с другой стороны. 
На ткани белой линии накладываем непрерывный скорняжный шов, а на кожу и подкожную клетчатку — узловатый. При боковом оперативном доступе на брюшину и поперечную фасцию накладываем непрерывный, в скорняжный шов. Мышцы расправляем по ходу волокон. На кожу и подкожную клетчатку применяем узловатый шов. Шов брюшины во всех случаях припудриваем порошком трициллина, а ушитую кожную рану обрабатываем 5 % спиртовой настойкой ода. Для предотвращения осложнений воспалительного характера самкам производим интраперитонеальную инъекцию пенициллин’ в 5 % растворе новокаина, между последними сосками в положении самки вниз головой.

Уход за животными

После проведения операции животному предоставляем покой и надеваем попону из мягкой ткани. Ежедневно шов обрабатываем раствором бриллиантовой зелени.

Во время проведения опытов у двух кошек и одной суки имело место осложнение в виде гнойного воспаления области шва. В данном случае нами была проведена антибиотикотерапия 4 % раствором гентамицина сульфата в дозе 0,5 мл 2 раза в день и витаминотерапии - раствором цианокобаламина в дозе .1 мл. Инъекция производилась внутримышечно в течение 5 дней. Швы во всех случаях снимались на 7-8 день.

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.С какой целью проводят стерилизацию животных?

2.В каком возрасте проводят стерилизацию самок?

3.Что необходимо помнить перед проведением операции?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 11.

Тема: Техника выполнение грыж (оперативное лечение).

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить выполнение грыж (оперативное лечение).

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, животные, хирургические инструменты, раствор йода, тесемчатый жгут, иглы, иглодержатель, шовный материал.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с инструментами, животными.

Ход работы:

1. Цели лечения – нормализация дефекации, предотвращение дизурии и ущемления органов. Нормальную дефекацию иногда удается поддерживать посредством слабительных, смягчителей стула, коррекции кормления и периодической эвакуации содержимого толстого отдела кишечника посредством клизм и мануального опорожнения. Однако, длительное использование данных методов противопоказано, ввиду вероятности развития ущемления внутренних органов, и основу лечения составляет хирургическая коррекция.

Для хирургической коррекции чаще всего используются две методики герниорафии: традиционная методика (методика анатомической репозиции) и транспозиция внутреннего обтуратора (внутренней запирательной мышцы). При традиционной методике создается большее напряжение в зоне операционной раны и возникают определенные трудности при закрытии вентрального края грыжевых ворот. Методика транспозиции внутренней запирательной мышцы требует большего профессионализма со стороны хирурга (особенно при выраженной атрофии обтуратора), но создает меньшее напряжение в зоне дефекта и позволяет достаточно легко закрывать вентральный край грыжевых ворот. Другие методики герниорафии могут включать использование поверхностной ягодичной, полусухожильной и полуперепончатой мышц, широкой фасции, применение синтетической сетки, подслизистого слоя тонкого кишечника а также сочетание данных техник.

При двусторонней промежностной грыже, часть врачей предпочитают проводить две последовательные операции на каждую сторону с интервалом 4-6 недель, но также вероятно проведение одномоментного закрытия дефекта. При последовательном закрытии дефекта снижается вероятность временной деформации ансуса и уменьшается послеоперационный дискомфорт и тенезмы, но выбор методики чаще зависит от предпочтений хирурга.

Хотя данные по эффективности несколько противоречивы, у не кастрированных кобелей во время операции все же показано проведение кастрации в целях снижения вероятности рецидивов грыжи а также для уменьшения размеров простаты при ее доброкачественной гиперплазии. Ушивание прямой кишки при подозрении на дивертикул проводится крайне редко, ввиду значительного повышения риска развития послеоперационной инфекции. Колопексия может снизить вероятность формирования послеоперационного выпадения прямой кишки. Вероятно также проведение цистопексии, но данная процедура проводится достаточно редко ввиду вероятности развития ретенционного цистита.

Предоперационная подготовка

За 2-3 дня до операции рекомендовано назначение смягчителей стула и слабительных. Непосредственно перед операцией проводится эвакуация содержимого толстого отдела кишечника посредством мануального опорожнения и клизмы. При смещении в полость грыжи мочевого пузыря – проводится его катетеризация. Антибиотики вводятся в целях профилактики внутривенно, сразу после седации животного.

Подготовка операционного поля и укладка

Операционное поле готовится на расстоянии 10-15 см вокруг промежности во все стороны (краниально над хвостом, латерально за седалищными буграми и вентрально за семенниками). Укладка животного на животе с оттягиванием и фиксацией хвоста. Оптимально проводить операцию у животного с приподнятым тазом.

Хирургическая анатомия

Диафрагму таза помимо фасции формируют две парные мышца (подниматель ануса и хвостовая мышца) и наружный сфинктер ануса. Подниматель ануса (m. levator ani) берет начало от дна таза и медиальной поверхности подвздошной кости, проходит латерально от ануса, затем сужается и прикрепляется вентрально к седьмому хвостовому позвонку. Хвостовая мышца (m. coccygeus) начинается на седалищной ости, ее волокна проходят латерально и параллельно поднимателю ануса, прикрепляется вентрально на II-V хвостовых позвонках.

Прямокишечно-копчиковая мышца (m. rectococcygeus) состоит из гладких мышечных волокон, начинается от продольной мускулатуры прямой кишки и прикрепляется вентромедиально на хвостовых позвонках.

Крестцовобугровая связка (l. sacrotuberale) у собак соединяет конец боковой части крестца и поперечный отросток первого хвостового позвонка с седалищным бугром. У кошек данное образование отсутствует. Седалищный нерв лежит непосредственно краниально и латерально по отношению к крестцовобугровой связке.

Внутренний запиратель – веерообразная мышца покрывающая дорсальную поверхность полости таза, он начинается на дорсальной поверхности седалищной кости и симфиза таза, проходит над малой седалищной вырезкой вентрально к крестцовобугровой связке. Внутренняя срамная артерия и вена а также срамной нерв проходят каудомедиально на дорсальной поверхности внутреннего запирателя, латерально к хвостовой мышце и поднимателю ануса. Срамной нерв расположен дорсально к сосудам и разделяется на каудальный ректальный и промежностный нервы.

В большинстве случаев грыжа формируется между наружным поднимателем ануса и самим анусом, и именуется кадуальной. При формировании грыжи между крестцово-бугровой связкой и ягодичной мышцей – грыжа именуется как седалищная. При формировании грыжи между поднимателем ануса и хвостовой мышцей, она именуется дорсальной. При формировании грыжи между седалищно-уретральной, бульбокавернозной и седалищно-кавернозной мышце, грыжа именуется вентральной.

Операционный доступ

Разрез кожи начинается под хвостом в зоне прохождения хвостовой мышцы, затем следует над припухлостью грыжи на 1-2 см латеральнее ануса и заканчивается на 2-3 см вентральнее дна таза. После рассечения подкожных тканей и грыжевого мешка, проводится идентификация грыжевого содержимого и рассечение фиброзного прикрепления его к окружающим тканям с последующим вправлением его в брюшную полость. Поддержание репозиции органов в брюшной полости проводится посредством влажного тампона или губки расположенных в грыжевом дефекте. Затем проводится идентификация мышц участвующих в формировании диафрагмы таза, внутренних срамных артерий и вен, срамного нерва, каудальных ректальных сосудов и нервов и крестцовобугровой связки. Далее проводится герниорафия в зависимости от выбранной методики.

Традиционная (анатомическая) герниорафия

При данной методики проводится сшивание наружного сфинктера заднего прохода с остатками хвостовой мышцы и поднимателя ануса а также с крестцовобугровой связкой и с внутренним обтуратором . Ушивание дефекта проводится узловатым швом, монофиламентной не рассасывающейся или длительно рассасывающейся нитью (0 - 2-0). Первые швы накладываются на дорсальном крае грыжевых ворот, постепенно перемещаясь вентрально. Расстояние между стежками шва не более 1 см. При наложении швов в область крестцовобугровой связки оптимально проходить через нее а не вокруг, ввиду вероятности захвата седалищного нерва. При наложении швов между наружным сфинктером и внутренним обтуратором следует избегать вовлечения срамных сосудов и нерва. Подкожные ткани собираются обычным образом с использованием рассасывающихся нитей, затем проводится ушивание кожи не рассасывающимся материалом.

Герниорафия с транспозицией внутренней запирательной мышцы.

Проводится рассечение фасции и периоста вдоль каудальной границы седалищной кости и места происхождения внутренней запирательной мышцы, затем при помощи периостального элеватора внутренний обтуратор приподнимается над седалищной костью и проводится транспозиция данной мышцы дорсомедиально в грыжевые ворота с расположением ее между наружным сфинктером, остатками мышц диафграмы таза а и крестцовобугровой связкой. Вероятно отсечение сухожилии внутреннего обтуратора от места прикрепления для облегчения закрытия дефекта. После чего накладываются узловые швы как при традиционной технике, медиально внутренний обтуратор соединяется с наружным сфинктером, а латерально с остатками мышц диафрагмы таза и крестцовобугровой связкой.

Послеоперационный уход

Для снижения боли, потуг и вероятности формирования выпадения прямой кишки – проводится адекватное послеоперационное обезболивание. При возникновении пролапса прямой кишки – проводится наложение временного кисетного шва. Антибактериальная терапия, в отсутствии значительных повреждений тканей,  прекращается через 12 часов после операции. Также, после операции проводится мониторинг состояния швов, на предмет вероятной инфекции и воспаления. В течение 1-2 месяцев проводятся коррекция диеты и назначаются препараты для смягчения стула.

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.Что необходимо учитывать при выполнении операции?

2.Как подготавливают животных к операции?

3.Какой необходим уход за животными после операции?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 12, 13.

Тема: Проведение ветеринарно – санитарных мероприятий по предупреждению инфекционных болезней

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить ветеринарно – санитарные мероприятия по предупреждению инфекционных болезней. Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе в лаборатории.

Ход работы:

1. В системе ветеринарных мероприятий ведущее место занимают общие профилактические меры, направленные на предупреждение заразных и незаразных болезней животных:

1. обеспечение животных полноценной кормовой базой, помещениями, уходом;
2. контроль за соблюдением зоогигиенических и ветеринарно-санитарных норм и правил в питомниках, постоянное наблюдение за состоянием животных с проведением клинических осмотров и диспансеризации; 
3. контроль за качеством кормов и питьевой воды (в пробах кормов определяют содержание в них питательных веществ, витаминов, минеральных солей, пестицидов и токсических веществ; рекомендации ветеринарных и агрохимических лабораторий являются основанием для запрещения скармливания животным недоброкачественных кормов);
4. систематическое изучение ветеринарно-санитарного состояния местности, населенных пунктов, питомников, а также предприятий по заготовке и переработке продукции животного происхождения (по своему хозяйству необходимо иметь следующие данные: заболеваемость животных по сезонам года (по почвенным инфекциям - за 20-25 лет); топографические и почвенные особенности территории питомника, мест водоисточника; места расположения старых скотомогильников, местонахождение перерабатывающих предприятий, складов хранения мяса и сырья, утилизационных заводов, их санитарное состояние; знать результаты исследований крови и патологического материала). 

При обследовании питомников обращают внимание на:

1. состояние животных по возрастным, устанавливают его соответствие данным бухгалтерского и зоотехнического учета (форма № 24); 
2. техническое и санитарное состояние помещений, а также соответствие размещения животных установленным нормам;
3. полноценность рационов, режим кормления и качество кормов; 
4. уровень заболеваемости животных в прошлом и в момент обследования;
5. правильность проведенных профилактических или лечебных мероприятий.

По итогам обследования составляют акт, в котором отмечают показатели, характеризующие ветеринарную и эпизоотическую обстановку в питомнике, дают заключение и рекомендации по устранению недостатков. При наличии заболевания и падежа животных указывают их причины, предлагают меры профилактики и лечения, определяют сроки выполнения и назначают ответственных лиц.

Клинический осмотр животных. Мероприятие имеет диагностическое и профилактическое значение. Различают: 

1. индивидуальный - индивидуальный осмотр предусматривает изучение общего состояния каждого животного, 
2. групповой - групповой осмотр предусматривает изучение общего состояния группы животных
3. общий, общий осмотр предусматривает изучение общего состояния всех животных.
4. плановый - плановый поголовный осмотр животных организуют перед вывозом животных из питомника.
5. внеплановый - внеплановый клинический осмотр животных проводят при возникновении массовых заразных и незаразных болезней, а также перед продажей.

При каждом посещении питомника ветеринарный врач делает общий осмотр животных. Животных с отклонением от нормы выделяют в отдельную группу и подвергают тщательному индивидуальному осмотру. После этого составляют опись осмотренных животных, где фиксируют данные о животных, предварительный диагноз, лечение, режим кормления и содержания.

Организованный осмотр животных, принадлежащих населению, проводят с участием представителя местного самоуправления. 

Диспансеризация животных включает плановые диагностические и лечебно-профилактические мероприятия, направленные на своевременное выявление субклинических и клинических признаков заболевания, профилактику болезней и лечение больных животных. 

Диспансенризация условно делится на три этапа: 

1. клинический - предусматривает общее обследование каждого животного, отбор проб крови, мочи для исследования в лаборатории. По полученным данным животных условно делят на три группы: 1 - клинически здоровые, не имеющие отклонений от нормы; 2 - клинически здоровые, но имеющие отклонения от нормы в показателях крови, мочи; 3 - явно больные
2. лечебный - всех больных животных подвергают повторному тщательному исследованию для уточнения диагноза и назначения соответствующего лечения.
3. профилактический - предусматривает устранение причин, вызывающих или обуславливающих заболевание животных.

Результаты диспансеризации животных заносят в диспансерную карту. 

  Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.С какой целью проводят ветеринарно – санитарные мероприятия по предупреждению инфекционных болезней?

2.Что необходимо учитывать при проведении ветеринарно – санитарных мероприятий по предупреждению инфекционных болезней?

3.Как проводят ветеринарно – санитарные мероприятия по предупреждению инфекционных болезней?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Практическое занятие № 14, 15.

Тема: Лечение пчелосемей неблагополучных по европейскому и американскому гнильцу

Цели учебного занятия:

Предметная цель: обеспечить закрепление знаний по изученной теме, способствовать выработки профессиональных умений и навыков.

Личностно-ориентированная цель: организовывать и проводить лечение пчелосемей неблагополучных по европейскому и американскому гнильцу.

Оснащения занятия: халаты, конспекты, ручки, антибиотики, сахарный сироп, пассика.

Инструктаж, проводимый преподавателем: работу нужно проводить в рабочей одежде (халаты), соблюдать личную гигиену и технику безопасности при работе с пчелами.

Ход работы:

1. Лечение проводят антибиотиками сульфаниломидной группы. В последнее время в аптеках практически нет никаких лекарств которые можно было бы использовать для лечения кроме тетрациклина, поэтому лекарство приходится покупать в пчеломагазинах, а там иногда их нет.

Итак, тетрациклин. Используются 1 грамм на 1 литр сиропа – это примерно 10 таблеток по 100 мг. Норсульфазол – 2 гр на 1 литр сиропа.

Препарат сначала растворяют в небольшом количестве тёплой воды температурой 37 0С, затем смешивают с сиропом, который дают в кормушках, расходуя 100-150 граммов на улочку пчёл. Подкормки повторяют 3-4 раза через каждые 5-7 дней. Препарат можно и распрыскивать в улье, но это как показала практика дает маленький результат, а потому нужно давать подкормку.

Кроме этого проводят обязательную смену всех зараженных рамок и также меняют матку так как она сама служит источником заражения.

Контрольные вопросы, вопросы к обсуждению:

1.Какие признаки говорят о американском гнильце?

2.По каким признакам мы можем поставить диагноз-европейский гнилец?

3.Как осуществляют лечение при американском и европейском гнильце?

 Критерии оценки:

«отлично» - задание выполнил полностью, ответил на контрольные вопросы в конце занятия;

«хорошо» - задание выполнил не полностью, не на все контрольные вопросы ответил в конце занятия;

«удовлетворительно» - задание выполнил частично, на большую часть вопросов не ответил в конце занятия;

«неудовлетворительно» - задание не выполнил вообще, на контрольные вопросы не ответил в конце занятия.

Список литературы:

- основная:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - М.: СП б, издательство «Лань» 2002. - 480 с.

Рекомендуемая литература

Основные источники:

1. Берестов В.А. Звероводство: учебник и учебное пособие для студентов /В.А. Берестов/ - СПб.: Издательство «Лань», 2002. - 480 с.
2. Стрельников А. А. Кормление и болезни собак и кошек: справочник. Учебники для вузов. Специальная литература. -  СПб.: Издательство «Лань», 2005. – 608 с.

Дополнительные источники:

1. Акбаев М. Ш., Василевич Ф.И., Балагула Т.В., Коновалов Н.К. Паразитология и инвазионные болезни животных/М.Ш. Акбаев/.- М.: Колос, 2001. – 528 с.: ил.
2. Белов А.Д., Данилов Е.П., Дукур И.И. Болезни собак. – М.: Агропромиздат, 1990. – 368 с.
3. Герасимчик В.А. Болезни мелких животных и птиц: учеб. пособие. – Ростов н/Д: Феникс, 2016. – 159 с.
4. Гриценко В.В. Болезни пищеварительной системы собак и кошек. – М.: ООО «АКВАРИУМ БУК», 2003. – 496 с. Электронная версия.
5. Иин С. Полный справочник по ветеринарной медицине мелких домашних животных. – М.: ООО «Аквариум-Принт», 2008. – 1024 с.
6. Масимов Н.А., Лебедько С.И. Инфекционные болезни собак и кошек: учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2009. – 128 с.
7. Масимов Н.А., Горбатова Х.С., Калистратов И.А. Инфекционные болезни пушных зверей: учебное пособие. – СПб.: Издательство «Лань», 2013. – 128 с.

Интернет-ресурсы:

1. Старченков С. В. Болезни собак и кошек. Учебник. www.twinpx.com/file/672712 (20.02.18)

2. Дорош М. В. Ветеринарный справочник для владельцев собак.

http:www .dogs breed.net (20.02.18)

3. Паразитические болезни кошек. Учебник.

http://www.real (20.02.18)

4.Митин В. Н. Доврачебная помощь мелким домашним животным.    Учебник. http:www.twirpx.com (20.02.18)

5. Журнал «Ветеринария» №1, 2012 г. – http:www.jawnalveterinariya.ru (20.02.18)

6.Инвазионные болезни пчел - http://www.beeland.ru/boleznipchel/bolezni1_43.html (20.02.18)

7.Медовое озеро информационный портал - http://honeylake.ru/infection/231 (20.02.18)

8.Ветеринарный энциклопедический словарь - http://edudic.ru/ves/913 (20.02.18)

 9.Инвазионные болезни кроликов -http://www.allvet.ru/diseases/rabbit_parasit5.php  (20.02.18)

10. Трематодозы 1991 Слепнев Н.К., Зеньков А.В. - Наши четвероногие... - http://kinlib.ru/books/item/f00/s00/z0000036/st122.shtml  (20.02.18)

 11.Справочник ветеринарного врача - http://kinlib.ru/books/item/f00/s00/z0000036/st133.shtml(20.02.18)

12. Домашний очаг - http://finmonster.ru/index.php?option=com_content&task=view&id=3022 (20.02.18)

13. Болезни животных - http://www.vseokey.info/vnutrennie/avitaminoz-k.php (20.02.18).

14. Болезни собак -  http://webmvc.com/bolezn/catdog3/index.php (20.02.18).

15.   Болезни плотоядных - http://webmvc.com/bolezn/catdog3/index.php (20.02.18).

16.  Болезни плотоядных - http://webmvc.com/bolezn/catdog3/index.php (20.02.18).

17.  Болезни плотоядных -http://webmvc.com/bolezn/catdog3/index.php (20.02.18).

18. Болезни собак  - http://friend.tj/infectious/ (20.02.18).

19. Болезни собак (незаразные) - http://kinlib.ru/books/item/f00/s00/z0000003/st005.shtml

 (20.02.18).

 20. Наши собаки - http://www.nashisobaki.com/illness14.html (20.02.18).