тесты, деловая игра
Процедура "Дискуссия"
Цель упражнения: - формирование паралингвистических и оптокинетических навыков общения; - совершенствование взаимопонимания партнеров по общению на невербальном уровне.
Группа разбивается на "тройки". В каждой тройке распределяются обязанности. Один из участников играет роль "глухого-и-немого": он ничего не слышит, не может говорить, но в его распоряжении - зрение, жесты, пантомимика; второй участник играет роль "глухого и паралитика": он может говорить и видеть; третий "слепой-и-немой": он способен только слышать и показывать. Всей тройке предлагается задание, например, договориться о месте, времени и цели встречи.
На упражнение отводится - 15 минут.
Процедура "Визуальное чувствование"
Цель упражнения: - совершенствование перцептивных навыков восприятия и представления друг друга.
Все садятся в круг. Ведущий просит, чтобы каждый внимательно посмотрел на лица остальных участников, и через 2-3 минуты все должны закрыть глаза и попытаться представить себе лица других членов группы. В течение 1-2 минут нужно фиксировать в памяти лицо, которое удалось лучше всего представить. После выполнения упражнения группа делится своими ощущениями и повторяет упражнение. Задание; каждый из участников должен постараться воспроизвести в памяти как можно большее количество лиц партнеров.
Процедура "Комфортное расстояние"
Цель упражнения: продемонстрировать на практике учащимся такое понятие как комфортное расстояние.
Один становится в круг, остальные медленно по одному приближаются. Тот, кто в круге, определяет где ему остановиться. Таким образом можно определить зону комфортного взаимодействия.
Скачать:
Предварительный просмотр:
Задания в тестовой форме.
Выберите один правильный ответ.
1. Дезинфекционное средство, обладающее моющим свойством
а ) сульфохлорантин Д
б) бианол
в ) бриллиант
г) гипохлорит натрия
2. Дезинфекцию и ПСО объединяют в один этап при использовании
а) хлорамина 3%
б) ГПХН
в ) бианола
г ) самаровки
3. Самоконтроль качества ПСО старшая медсестра отделения проводит
а) 1 раз в неделю
б) 1 раз в месяц
в) 1 раз в квартал
4. Температурный режим сушки мединструментария перед стерилизацией в градусах Цельсия
а ) 60-65
б) 70-75
в) 80-85
г) 90-95
5 .Рабочий раствор азопирима пригоден в течение
а) 30 минут
б) 1-2 часов
в) 12 часов
г) 1 суток
6. Пригодность рабочего раствора азопирима проверяют нанесением 2-3 капель раствора на
а) стерильный ватный шарик
б) стерильный тампон
в) стерильную салфетку
г) кровяное пятно.
7. При положительной азопирамовой пробе появляется окрашивание раствора
а) зеленое, переходящее в фиолетовое
б) фиолетовое, переходящее в розово-сиреневое и бурое
в) фиолетовое, переходящее в зеленое
г) синее, переходящее в фиолетовое
8. Количество инструментов для контроля качества ПСО
а) 3% от обработанной партии
б) 5% от обработанной партии
в) 1% от обработанной партии
г) 1 инструмент
9. Термин «стерилизация »переводится как:
а) уничтожение
б) обеспложивание
в) обеззараживание
г) удаление
10. Полное уничтожение микроорганизмов и их спор – это:
а) дезинфекция
б) стерилизация
в) дезинсекция
г) дератизация
11. Для стерилизации инструментов применяют перекись водорода концентрации:
а)6%
б) 4%
в) 3%
г) 1%
12. Для стерилизации одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения в промышленности используют:
а) УФ - лучи
б) пар
в) гамма-излучение
г) химические вещества
13. Время стерилизации инструментария в сухожаровом шкафу при температуре 180 градусов С в минутах:
а) 20
б) 30
в) 40
г) 60
14. Индикатор стерильности в паровом стерилизаторе при давлении 1,1 атм , экспозиции 45 мин. :
а) ИС-120
б) ИС-132
в) ИС-160
г) ИС-180
15.Для химической стерилизации используют раствор :
а) 0,05% анолита
б) 0,2% сульфохлорантина Д
в) 3%перекиси водорода
г) 70% этилового спирта
16.Срок стерильности мединструментария в невскрытых стерилизационных коробках КС, в сутках:
а) 1
б) 3
в) 5
г) 20
17.Срок стерильности мединструментария в невскрытой стерилизационной коробке с фильтром (КФ), в сутках:
а) 1
б) 3
в) 5
г) 20
18. Срок стерильности пинцета в крафт - пакете , в сутках:
а) 20
б) 5
в) 3
г) 1
19.Время стерилизации белья в паровом стерилизаторе, в минутах:
а) 40
б 30
в) 20
г) 10
20.В состав ЦСО входит:
а) стерильный блок
б) процедурный кабинет
в) изолятор
г) кабинет врача
21.Вид укладки, содержащей только халаты:
а) видовая
б) универсальная
в) целенаправленная
г) смешанная
22. Метод стерилизации белья :
а) химический
б) воздушный
в) паровой
г) гамма-излучение
23. Укладка бикса, содержащая белье и перевязочный материал:
а) видовая
б) целенаправленная
в) смешанная
г) универсальная
24. Индикатор стерильности перевязочного материала, белья:
а) И-180
б) ИС-160
в) ИС-132
г) ИС-120
25.Индикатор стерильности изделий из стекла и металла в паровоздушном стерилизаторе:
а) ИС-180
б) ИС-160
в) ИС-132
г) ИС-120
26. Режим стерилизации изделий из стекла и металла в паровоздушном стерилизаторе:
а) 1,1атм-120®С-45 минут
б) 2 атм-132®С-20 минут
в) 160®С-120 минут
г) 180®С-60 минут
27.Режим стерилизации изделий из стекла и металла при автоклавировании:
а) 1,1атм-120®С-45 минут
б) 2 атм-132®С-20 минут
в) 160®С-150 минут
г) 180®С-60 минут
28.Режим стерилизации перевязочного материала и белья при автоклавировании:
а) 1,1атм-120®С-45 минут
б) 2 атм-132®С-20 минут
в) 160®С-150 минут
г) 180®С-60 минут
29. Срок стерильности хирургического белья в невскрытой стерилизационной коробке (КС) составляет:
а) 6 часов
б) 3 суток
в) 20 дней
г) 1 месяц
30.Срок стерильности перевязочного материала в невскрытой стерилизационной коробке с антибактериальным фильтром(КФ) составляет:
а) 6 часов
б) 3 суток
в) 20 дней
г) 1 месяц
31.Срок стерильности изделий в двухслойной хлопчатобумажной упаковке составляет:
а) 6 часов
б) 3 часа
в) 3 суток
г) 1 сутки
32.Химический раствор, обладающий стерилизующим действием:
а ) сульфохлорантин Д 0,2%
б) самаровка 2%
в) аламинол 5%
г) перекись 6%
33.Индикатор стерильности изделий из резины :
а) ИС-180
б) ИС-160
в) ИС-132
г) ИС-120
34.Метод стерилизации для резиновых катетеров :
а) воздушный
б) паровой
в) химический
г) радиационный
35.Стерилизацию металлических изделий в открытом виде проводят:
а) паром под давлением
б) горячим воздухом
в) окисью этилена
г) гамма-лучами
36.Хлопчатобумажную укладку используют при стерилизации:
а) химической
б) воздушной
в) паровой
г) газовой
37.Стеклянные клизменные наконечники для стерилизации укладывают:
а) в крафт-пакеты
б) на решетки
в) в пергамент
г) на лотки
38.Стерилизацию биологических препаратов проводят :
а) сухим горячим воздухом
б) паром под давлением
в) химическими препаратами
г) гамма-лучами
39. Стерилизацию шовного материала проводят:
а) сухим горячим воздухом
б) паром под давлением
в) ультразвуком
г) окись этилена
40.Вид стерилизации одноразовых капельных систем:
а) сухой жар
б) пар под давлением
в) ультразвук
г) радиационный
Ситуационные задачи
Задача №1
Вы медсестра центрального стерилизационного отделения.
При проведении контроля качества предстерилизационной очистки с помощью азопирамовой пробы появилось окрашивание реактива в фиолетовый цвет , переходящий в бурый ,в течение 1 минуты.
Задание :
1.Оцените ситуацию.
2.Определите объем сестринских вмешательств.
Задача №2
Вы старшая медсестра хирургического отделения.
При определении пригодности рабочего раствора азопирама нанесли 2 капли его на кровяное пятно. В течение 1 минуты цвет кровяного пятна не изменился.
Задание:
1.Оцените ситуацию.
2.Определите объем сестринских вмешательств.
Задача №3
Вы медсестра процедурного кабинета .
При вскрытии стерилизационной коробки КФ с универсальной укладкой обнаружили, что индикаторная лента ИС-132 не изменила свой цвет.
Задание :
1.Оцените ситуацию.
2.Определите объем сестринских вмешательств.
Задача№4
Вы медсестра операционного блока.
При снятии использованных перчаток вы коснулись незащищенными пальцами рабочей поверхности отработанной перчатки. Ваши действия.
Предварительный просмотр:
ФГВОУ ВПО «Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова»
Министерства обороны Российской Федерации
Медицинский колледж
УТВЕРЖДАЮ
Заместитель директора Медицинского колледжа
(по учебной работе)
И. Гордова
«____» ____________ 20___ г.
МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА
по дисциплине: «Основы сестринского дела»
на тему: «Инфекционный контроль и профилактика внутрибольничных инфекций. Стерилизация».
для студентов 1-го курса
по специальности 060501 «Сестринское дело»
базовый уровень среднего профессионального образования
квалификация медицинская сестра (брат)
Преподаватель: Левковская Е.Н.
Обсуждена и одобрена
на заседании ЦМК
«____» __________ 20___ г.
Протокол №__
Председатель ЦМК
_____________________
Уточнено (дополнено):
_____________________
Протокол №__
Председатель ЦМК
Санкт-Петербург
Тема: «Инфекционный контроль и профилактика внутрибольничных инфекций. Стерилизация»
Контингент обучаемых: медицинские сестры 1 года обучения
Учебные и воспитательные цели:
Общая цель занятия обучить студентов принципам работы центрального стерилизационного отделения.
-Студент должен знать этапы предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения.
- Методы, средства и режимы стерилизации.
- Виды контроля режима и качества стерилизации.
Частные цели занятия (учебные задачи):
Студент должен уметь:
а) приготовить перевязочный материал»
б)уложить в стерилизационную коробку: перевязочный материал. Изделия медицинского назначения, и их хирургическое белье;
в) уложить в крафт – пакет: перевязочный материал, изделия медицинского назначения;
г)пользоваться стерильной коробкой (КС), (КФ);
д)надеть стерильные перчатки, снять перчатки;
е)надеть стерильный халат;
ж)накрыть стерильный лоток в процедурном кабинете;
з)накрыть стерильный стол в процедурном кабинете.
Воспитательные цели:
Выработка и совершенствование у студентов норм профессиональной этики и деонтологии, ответственности, профессионализма при осуществлении сестринского ухода, потребности пропагандировать здоровый образ жизни среди гражданского населения и военнослужащих.
Учебное время – 18 часов (3 занятия)
УЧЕБНО-МАТЕРИАЛЬНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ
Литература:
обязательная (основная);
-«Основы сестринского дела: теория и практика» Л.И Кулешова, Е.В. Пустоветова, Ростов – на –Дону «Феникс»2008;
-«Основы сестринского дела» Т.П. Обуховец, Т.А. Склярова, О.В. Чернова, Ростов – на – Дону «Феникс» 2000;
-«Основы сестринского дела», С.И. Двойникова, Москва, Издательский центр «Академия» 2009.
б) дополнительная:
-«Внутрибольничная инфекция» В.Л. Осипова, Москва Издательская группа «ГЭОТАР»-Медиа» 2009;
-«Дезинфекция» В.Л. Осипова, Москва Издательская группа «ГЭОТАР»-Медиа» 2009;
2) Технические средства обучения
1. Доска классная | 1 |
2. Стол преподавательский | 1 |
3. Стул для преподавателя | 1 |
4. Столы для студентов | 20 |
5. Стулья для студентов | 30 |
6. Книжный шкаф | 1 |
7. Телевизор | 1 |
8. Видеомагнитофон | 1 |
9. Проигрыватель | 1 |
10. Кодоскоп | 1 |
11. Штатив для таблиц | 1 |
3) Наглядные пособия
тесты, ситуационные задачи, тестовые задачи на соответствие
Стимульный материал и другое материальное обеспечение
Тестовые задания - 10 шт.
Чистые листы бумаги формата А4 - 10шт.
Ситуационные задачи - 4 шт.
Тестовые задачи на соответствие -6 шт.
План проведения занятия и расчет учебного времени.
№ пп. | Учебные мероприятия и вопросы | Время (мин.) |
1 | 2 | 3 |
1. | Самостоятельная работа (подготовка) к занятию | 10 |
Практическое занятие | ||
2. | Введение | 5 |
3. | Контроль исходного уровня знаний | 15 |
4. | Контроль усвоения основных этапов ориентировочной основы действий | 15 |
5. | Самостоятельная работа студентов, подготовка к надеванию стерилизованной одежды, накрывание стерильного стола. | 170 |
6. | Определение итогового уровня знаний | 20 |
7. | Заключение преподавателя, объявление задания на следующее занятие | 5 |
СОДЕРЖАНИЕ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ЗАНЯТИЯ
1. Самостоятельная подготовка к занятиям
Самостоятельная подготовка проводится организованно в составе учебной группы накануне дня практического занятия. Место проведения – учебный класс колледжа. Время –270 мин.
Преподаватель организует самоподготовку, ставит задачи отработки указанных ниже учебных вопросов и нацеливает студентов на то, что в ходе практического занятия основное внимание (время) будет уделено выработке практических навыков общения медицинской сестры с пациентом, с использованием знаний полученных на лекциях и в ходе настоящей самоподготовки.
Студенты ориентируются на обязательность проверки в начале занятия исходного уровня знаний по основам сестринского дела с выставлением им оценки.
Кроме того, обучаемым рекомендуется изучить материалы разделов, которые не будут рассматриваться на предстоящем практическом занятии, но необходимы для практической деятельности медицинской сестры, а также выносятся на зачет.
Таким образом, студентам на самоподготовку ставятся задачи:
подготовиться к предстоящему занятию согласно имеющихся вопросов для самоподготовки;
изучить материал, который не будет рассматриваться на предстоящем занятии, но необходим для практики и для сдачи зачета.
Самоподготовка организуется старостой группы, обеспечивается и контролируется колледжем в лице дежурного преподавателя.
Преподаватель контролирует посещение, организацию работы и материальное обеспечение самоподготовки.
Учебно-материальное обеспечение. Дежурный из числа студентов получает у преподавателя или в библиотеке литературу основную и дополнительную согласно указанного списка.
ПРАКТИЧЕСКОЕ ЗАНЯТИЕ
1. Вводная часть
В водной части преподаватель подчеркивает важное значение профилактических мер при ВБИ в профессиональной деятельности медицинской сестры.
Преподаватель проверяет и отмечает посещаемость занятия, а также проверяет уровень подготовки по предыдущим занятиям.
Полученная информация учитывается при постановке задач и в индивидуальной работе с каждым обучаемым. Преподаватель убеждает обучаемых в успешном освоении изучаемой темы при их надлежащей работе на занятии.
2. Контроль исходного уровня знаний обучаемых
Контроль проводится в устной форме, что позволяет путем живого общения судить о знаниях терминологии, об умении их излагать и владеть учебным материалом по основам сестринского дела. Вопросы для контроля приведены в приложении №1 к методической разработке. По усмотрению преподавателя, ведущего занятие, могут задаваться и другие дополнительные вопросы. Контроль завершается выставлением оценки по 5-ти балльной системе.
В зависимости от результатов опроса преподаватель оценивает исходный уровень знаний обучаемых, вносит коррективы и учитывает их при постановке задач на самостоятельную работу в ходе занятия, а также при рейтинговой оценке знаний за учебный цикл и решении вопроса о допуске к зачету.
3. Основная часть
Основные понятия темы: асептика, антисептика, бактериостатичность, бактериоцидность, вирулицидность, дезинфектанты. деконтаменация, инвазивные процедуры, инфекционный контроль, инфицирование (инфекция), контаменация, очистка, патоген, споры, стерильное поле, стерилянты.
ИНФОРМАЦИОННЫЙ МАТЕРИАЛ
Структура центрального стерилизационного отделения.
Задачи центрального стерилизационного отделения (ЦСО)-обеспечение лечебно-профилактического учреждения изделиями медицинского назначения и внедрение в практику современных методов предстерилизационной очистки и стерилизации.
Принципы размещения и планирования ЦСО:
-изоляция от других помещений лечебного учреждения;
-функциональное зонирование ,то есть назначение и размещение помещений соответствует рациональному проведению технологического процесса и не нарушает режим ЦСО;
-зонирование, то есть разделение всех помещений технологического процесса на зоны: стерильную и не стерильную ;
-поточность с выделением отдельных потоков обработки:
-белья и перевязочного материала;
-инструментов, шприцев, игл, термолабильных изделий;
-перчаток в изолированном непроходном помещении.
Размер и отделка помещений определяются в зависимости от назначения каждого из них, мощности ЦСО и используемого оборудования.
Персонал ЦСО осуществляет:
-прием и хранение использованных нестерильных изделий;
-разборку;
-бракераж;
-учет и замену сломанных изделий;
-мелкий ремонт и заточку;
-предстерилизационную очистку;
-комплектование;
-упаковку;
-стерилизацию;
-контроль качества предстерилизационной очистки и работы стерилизаторов;
-выдачу стерильных изделий.
ЦСО должно располагать набором помещений, которые делят на две зоны: нестерильную и стерильную.
В нестерильной зоне находятся следующие помещения:
-приема, разборки, ПСО;
-мелкого ремонта и заточки инструмента;
-изготовления и упаковки перевязочного материала, упаковки белья;
-обработки резиновых перчаток;
-контроля комплектации и упаковки инструментария;
-для хранения нестерильных материалов, инструментов, белья;
-водоподготовки;
-кладовая тары и упаковочных материалов;
-стерилизационная со стерилизаторами проходного типа (загрузочная сторона);
- кабинеты заведующего и старшей сестры;
-кабинет персонала;
-санузел;
-кладовая предметов уборки (в числе моющих и дезинфицирующих средств);
-для дезинфекции тележек, контейнеров;
-санитарный пропускник для персонала, работающего в стерильной зоне.
На стерильной зоне располагают:
-стерилизационную (разгрузочная сторона стерилизатора);
-склад для стерильных материалов;
-экспедицию;
-помещение для персонала стерильной зоны.
При отсутствии возможности иметь полный набор помещений можно ограничиться следующим минимумом:
-помещение приема, разборки и подготовки инструментов и материалов (мойка, сушка, контроль, упаковка);
-стерилизационная;
-помещение для хранения и выдачи стерильных изделий.
При планировании помещений целесообразно предусмотреть организацию двух потоков обработки:
1 –й поток – обработка и стерилизация инструментов, резиновых изделий;
2 –й поток-подготовка и стерилизация белья и перевязочного материала.
Все помещения ЦСО оборудуют приточно-вытяжной вентиляцией, которая должна работать на протяжение всего рабочего дня. Помещения упаковочной и стерилизационной оснащают бактерицидными лампами.
Персонал должен пройти инструктаж по технике безопасности, противоэпидемическому режиму и методикам работы. Лица, работающие на аппаратах под давлением, должны пройти обучение на специальных курсах и иметь удостоверение о допуске к работе на указанных аппаратах.
Ответственность за организацию ЦСО, качество работы, расстановку кадров возлагается на главного врача лечебно-профилактического учреждения.
Предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения
Второй этап обработки инструментов ОСТ-42-21-2-85
Предстерилизационную (биологическую) очистку проводят после дезинфекции и отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой.
Цель: предстерилизационной очистки – удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов.
От качества предстерилизационной обработки и дезинфекции медицинских инструментов и материалов зависит состояние противоэпидемического режима в ЛПУ.
Алгоритм проведения предстерилизационной обработки:
Всю предстерилизационную очистку проводить в перчатках.
Разъемные изделия разобрать.
Ватно-марлевые тампоны для механической очистки менять после каждой обработки.
Моющий раствор подогревать только к моменту погружения в него инструмента.
Соблюдать температурный режим моющего раствора.
Моющий раствор в течение суток можно подогревать 6 раз или применять его до появления розового окрашивания (что свидетельствует о загрязнении кровью)
При применении средства «Биолот» (в состав входят ферменты) на 1 литр моющего раствора используют: 5 гр порошка + 995 мл воды.
Погрузить изделия на 15 мин при температуре 40-45º С, так как при комнатной температуре биологически активные вещества (ферменты) выделяются очень медленно в раствор, а при высокой разрушаются; промыть под проточной водой в течение 3 мин, ополоснуть в дистиллированной, высушить.
Дезинфектанты, обладая способностью убивать живую клетку, не могут быть абсолютно безвредны для организма человека, который состоит из множества клеток. Поэтому проведение дезинфекционных мероприятий в ЛПУ связано с опасностью для здоровья персонала.
Современные дезинфектанты более эффективны, не требуют подогрева, позволяют проводить обеззараживание и предстерилизационную очистку в совмещенном процессе.
После проведения предстерилизационной очистки необходимо провести контроль эффективности обработки.
Усовершенствование процесса предстерилизационной очистки изделий возможно за счет обработки изделий моющими или моюще-дезинфицирующими средствами в сочетании с ультразвуком. Это позволяет сократить трудоемкость и повысить качество стерилизации мединструментов, а также обеспечить охрану здоровья медицинских работников.
После проведения ультразвуковой очистки инструмент вновь промывают проточной водой и только после этого извлекают из поддона для сушки и стерилизации.
Основные преимущества ультразвуковых моек:
-минимальное применение ручного труда;
-снижение риска инфицирования;
-существенное снижение трудоемкости;
-улучшение качества очистки, в том числе труднодоступных участков изделий;
-сокращение времени обработки, особенно в больших объемах;
-повышение экологической чистоты процессов (за счет существенного уменьшения химических веществ в процессе очистки);
-щадящий режим воздействия, не допускающий повреждение инструмента.
Предстерилизационная очистка ИМН (совмещенная дезинфекция и ПСО в одном процессе)
Последовательность действий:
Надеть перчатки.
Заполнить контейнер моюще-дезинфицирующим раствором.
Разобрать и погрузить полностью ИМН, заполнив полости, закрыть крышкой.
Выдержать экспозиционное время.
Очистить изделие тканевыми салфетками, ватно-марлевыми тампонами или щетками от биологических остатков, сбросить в дезинфектант (механическая очистка).
Поместить инструменты на сетки или в лотки.
Промыть каждое изделие под проточной водой, пропуская воду через полости.
Ополоснуть каждое изделие в дистиллированной воде 30 сек.
Высушить ИМН в сухожаровом шкафу (Т=80-85º С) до полного исчезновения влаги.
Снять перчатки.
Изделия проверить на качество ПСО, уложить и подвергнуть стерилизации.
Качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения.
Качество предстерилизационной очистки проверяют пробами:
- на остатки крови, дезинфектантов, остаточные количества щелочных компонентов моющего средства.
-азопирамовая – универсальная;
На остатки моющего средства
-фенолфталеиновая.
Контролю качества предстерилизационной очистки подвергают не менее 1 % одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3—5 единиц.
Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки проб на наличие:
• следов хлора или других дезинфицирующих средств;
• крови — азопирамовой, амидопириновой;
• остаточных щелочных компонентов моющего средства — фенолфталеиновой;
• жировых, белковых остатков — судан-3.
С введением «Методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирама» была отменена бензидиновая проба (методические рекомендации утверждены 26.05.1988 г., № 28-6/13).
Заключительным этапом предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения является контроль качества отмывки от кровяных, белковых, жировых и прочих загрязнений с помощью специальных реактивов.
Контроль могут проводить на рабочих местах медсестры (самоконтроль), а также старшая медсестра и заведующий центральным стерилизационным отделением.
Азопирамовая проба
Азопирам хранят в плотно закрытом флаконе при температуре 4 °С в холодильнике в течение 2 мес, в темном месте при комнатной температуре — не более 1 мес. Умеренное потемнение реактива без выпадения осадка не снижает его качества.
Пригодность рабочего раствора азопирама медсестра проверяет следующим образом. Наносят 2—3 капли раствора на участок крови;
• если не позже чем через 1 мин появится фиолетовое окрашивание, быстро (в течение нескольких секунд) переходящее в розово-сиреневое или буроватое, реактив годен к использованию;
• если окрашивание в течение 1 мин не появится, реактивом пользоваться нельзя («Методические рекомендации по организации ЦСО в ЛПУ» № 15-6/8 от 21.12.1989 г., Приказ МЗ СССР № 720 от 31.07.1978 г.).
Азопирам выявляет также наличие хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, ржавчины.
Реактив готовят непосредственно перед проведением пробы на качество предстерилизационной очистки.
Проведение пробы
На инструмент наносят 2—3 капли раствора реактива или протирают тампоном, смоченным в растворе реактива: азопирама, амидопирина, фенолфталеина, судана-3.
При наличии крови проводят пробу с амидопирином и азопирамом, при этом происходит окрашивание:
• с азопирамом — в течение 1 мин появляется фиолетовое, затем розово-синее или буроватое окрашивание; если буроватое окрашивание продолжается более 1 мин, то реакция не учитывается; буроватое окрашивание возникает при наличии ржавчины и хлорсодержащих окислителей, в остальных случаях окрашивание розово-синее; с амидопирином — сине-зеленое (положительная реакция).
При наличии остатков моющего средства проводят пробы:
• с фенолфталеином: 1—2 капли 1 % спиртового раствора наносят на изделия, при наличии остатков моющего средства возникает розовое окрашивание;
• с суданом - 3 наличие желтых пятен, подтеков говорит о присутствии жировых наслоений; в шприц вносят 3—5 мл раствора, смачивают всю поверхность в течение 10 с, краску смывают обильной струей воды.
Для контроля труднодоступных мест применяют ватные турунды, смоченные в реактиве.
Для проверки шприца в него наливают реактив и несколько раз продвигают поршень, смачивая стенки, затем вытесняют реактив на марлевую салфетку или вату.
Для проверки игл в шприц наливают реактив, не давший положительной пробы, последовательно сменяя иглы, пропускают реактив через них, вытесняя по 3—4 капли на марлевую салфетку.
Для проверки катетеров и других полых изделий в них вводят реактив пипеткой (чистым шприцем), после непродолжительного контакта реактива его сливают на марлевую салфетку.
Самоконтроль предстерилизационной очистки изделий в лечебно-профилактических учреждениях должен проводиться ежедневно. Результаты контроля отражают в журнале ф. 257/у.
При положительных пробах всю группу проверяемых изделий, из которых отбирали инструмент на контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов (при азопирамовой, амидопирамовой, судановой пробах—предстерилизационная очистка, при фенолфталеиновой — отмывка водой).
Виды и методы стерилизации
Инструменты, бывшие в употреблении (биозагрязненные кровью, слюной, гноем, мочой), сразу же подвергают дезинфекции, затем предстерилизационной очистке, только после этого проводят стерилизации в лечебном отделении или ЦСО.
Третий этап обработки инструментов.
ОСТ-42-21-2-85.
Стерилизация обеспечивает гибель на стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных организмов.
Стерилизации должны подвергать все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.
Методы и виды стерилизации:
Физический метод (паровой, воздушный, гласперленовый, радиационный).
Химический метод (газовый, растворы стерилянтов).
Физическая стерилизация
Паровой метод стерилизации - стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением, температурой 120-132º С; стерилизацию осуществляют в паровых стерилизаторах (автоклавах). В стационарах используют два режима стерилизации:
1-й режим (основной) – для изделий из корозионностойкого металла (инструмент), стекла (клизменные наконечники), изделий из текстильных материалов (хирургическое белье, перевязочный материал);
2-й режим (щадящий)- для изделий из резины (мочевые катетеры, желудочные зонды), латекса(хирургические перчатки) и полимерных материалов (носовые катетеры, клизменные наконечники).
Изделия для стерилизации помещают в стерилизационные коробки (биксы), двухслойную мягкую упаковку из хлопчатобумажной ткани, крафт, пергаментной, ламинированной и крепированной бумаги.
Виды стерилизационных коробок.
Коробка стерилизационная (КС) – корпус имеет боковые отверстия, через которые свободно проходит пар внутрь при стерилизации в автоклаве. Эти отверстия открываются и закрываются передвижением специального металлического пояса на корпусе коробки.
Коробка стерилизационная (КФ) – корпус имеет отверстия, расположенные на крышке и днище. Изнутри эти отверстия закрыты бактериальными фильтрами. Фильтры обеспечивают стерильность изделий в течение 20 суток при условии ежемесячной замены.
Изделия перед закладкой бикс упаковывают в пергаментную бумагу (крафт-пакет), хлопчатобумажную ткань, а также используют другие виды упаковочного материала, например:
-комбинированные пакеты (ламинат+бумага) запечатанные с помощью термосварочного аппарата;
-бумажные пакеты, запечатанные с помощью термосварочного аппарата;
-двухслойная упаковка из листовой упаковочной бумаги, закрепленной липкой лентой.
Запрещают:
Использовать медицинское изделие из упаковки, если
-истек срок хранения изделий, принятый для данного вида упаковок;
-отсутствует информация о дате стерилизации и конечном сроке хранения;
-нарушена целостность упаковки;
-химический индикатор не изменил свой цвет;
-упаковка находится во влажном состоянии (подмочена).
Подготовка стерилизационной коробки (КС) к стерилизации
Последовательность действий:
Обработать руки.
Проверить детали коробки на герметичность:
-плотность закрытия крышки;
-легкость передвижения пояса и точность совпадения отверстий корпуса с отверстиями пояса;
-прочность фиксации металлического пояса и точность совпадения отверстий корпуса с отверстиями пояса;
-прочность фиксации металлического пояса к корпусу зажимным устройством.
3. Закрепить пояс в положении, при котором отверстия корпуса открыты.
4. Выстелить дно и стенки коробки салфеткой или простыней.
5.Уложить в бикс перевязочный материал и операционное белье.
6.Поместить индикаторы стерильности материала.
7.Провести маркировку стерилизационной коробки.
Способы укладки стерилизационных коробок
При видовой укладке в стерилизационную коробку кладут только один вид изделий медицинского назначения (операционное белье, перевязочный материал, перчатки, зонды).
При универсальной (комплектной) укладке стерилизационную коробку укладывают в строго определенном порядке по принципу 3-слойного заполнения бикса:
Нижний слой – перевязочный материал,
Последующий слой – простыни,
Верхний слой – халат,
Помещают индикатор стерильности (укладку используют в перевязочной для накрытия стерильного стола).
При целенаправленной укладке в стерилизационную коробку помещают белье и перевязочный материал, необходимые для определенной операции.
При любом способе коробку заполняют на 70% своего объема: рыхло, свободно, параллельно движению пара для проникновения во все складки и на все поверхности стерилизуемых изделий.
Подготовка изделий из резины для проведения стерилизации.
Желудочные зонды, мочевые катетеры, газоотводные трубки помещают в хлопчатобумажную ткань, исключая перегибы и контакты двух резиновых поверхностей.
Перчатки перед стерилизацией внутри и снаружи пересыпают тальком для предохранения от склеивания (предварительно тщательно высушив). Между перчатки прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток заворачивают отдельно в хлопчатобумажном ткань или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку.
Укладка изделий из резины в стерилизационную коробку.
Последовательность действий:
Обработать руки.
Выстелить салфеткой дно и края стерильной коробки (КС или КФ) так, чтобы она свисала на 2/3 высоты емкости.
Поместить упакованные изделия параллельно движению пара, свободно.
Поместить индикатор стерильности.
Завернуть свободные концы салфетки.
Поместить салфетку для обработки рук.
Промаркировать коробку, поместить в мешок и оправить в ЦСО.
Подготовка перевязочного материала
Последовательность действий:
Обработать руки.
Приготовление марлевых шариков:
Нарезать марлю 6 × 8 см( средние шарики);
Получить марлевую полоску, загнув противоположные концы марли на 2 см, чтобы спрятать нити;
Обернуть марлевую полоску вокруг большого пальца или фаланги 2-го и 3-го пальцев левой кисти в виде кулака, внутрь которого завернуть свободные концы;
Сложить полученные шарики в марлевые мешочки по 50 штук.
Обработать руки.
Приготовление марлевых салфеток:
Нарезать марлю размером 20×25 см , 30×40 см для малых и средних салфеток;
Подвернуть края больших сторон по длине, чтобы они заходили друг за друга;
Подвернуть края меньших сторон по ширине, чтобы они соприкасались друг с другом;
Свернуть салфетка пополам;
Сложить салфетки по 10 штук, связать полоской марли.
Укладка перевязочного материала в стерилизационную коробку
Последовательность действий:
Обработать руки.
Выстелить салфеткой дно и края стерильной коробки (КС или КФ) так, чтобы она свисала на 2/3 высоты емкости.
Уложить послойно рыхло перевязочный материал:
а)секторально
б) вертикально
4. Накрыть салфеткой , свисающей с бикса.
5. Поместить салфетку для обработки рук, поместить индикатор стерильности.
6. Закрыть крышку бикса.
7. Привязать к ручке бирку и указатель:
а) дату укладки;
б) отделение;
в) поставить подпись.
8. Поместить в мешок и отправить в ЦСО.
Укладка хирургического белья в стерильную коробку
Последовательность действий:
1. Обработать руки.
2. Выстелить салфеткой дно и края стерильной коробки ( КС или КФ) так, чтобы она свисала на 2/3 высоты емкости.
3. Поместить индикатор стерильности.
4. Сложить две простыни в 6 слоев:
а)первая простыня складывается поперек, вдоль и ещё несколько раз (3-4) вдоль с учетом величины емкости для последующего разворачивания в два слоя разворачивания в два слоя;
б) вторая простынь складывается поперек , вдоль и ещё несколько раз (3-4) поперёк с учетом величины емкости для последующего разворачивания в четыре слоя.
5. Поместить халат параллельно движению пара, горловиной к крышке:
а) сложить халат продольно изнанкой наружу и тесемками внутрь;
б) свернуть рыхло.
6. Уложить маску поверхность между халатом о простыней.
7. Уложить в середине укладки индикатор стерильности.
8. Накрыть салфеткой, свисающей с бикса.
9. Поместить салфетку для обработки рук , поместить индикатор стерильности.
10. Привязать к ручке бирку и указать:
а) дату укладки
б) отделение
в) поставить подпись
11. Поместить в мешок и отправить в ЦСО.
Пользование стерильной коробкой
Последовательность действий:
Проверить на герметичность .
Обработать руки на гигиеническом уровне.
Открыть коробку , вновь обработать руки кожным антисептиком.
Оценить индикатор стерильности, состояние укладки(изменение цвета индикатора и сухость белья – обеспечение стерильности).
Извлечь стерильным корнцангом ( пинцетом) содержимое укладки( например , перчатки , зонд , катетер).
Закрыть стерилизационную коробку.
Стерилизация паровым методом- автоклавированием ( водяной насыщенный пар под избыточным давлением)
Сроки сохранения стерилизации изделий зависят от упаковки:
а)изделия, простерилизованные в стерилизационных коробках без фильтра (КС), - 3 суток( 72 часа);
б) в стерилизационных коробках с фильтром (КФ)- до 20 суток при условии ежемесячной смены фильтров;
в) в двойной мягкой упаковке из хлопчатобумажной ткани, крафт- бумаге- 3 суток( 72 часа).
Облачение в стерильный халат
При обработке рук на гигиеническом уровне сестра использует стерильный корнцанг, или пинцет. На хирургическом- работаем руками.
Последовательность действий:
Открыть бикс, используя ножную педаль или помощника.
Оценить индикатор стерильности, состояние белья.
Извлечь шапочку, маску и надеть их.
Извлечь халат за край воротника, не касаясь его наружной поверхности.
Повернуть внутренней стороной к себе и держать на уровне лица.
Вдеть в рукава халата путем набрасывания на правую, а
затем левую руку ( или одновременно подняв руки вверх и разведя их в стороны).
Завязать тесемки на рукавах.
Взять пояс халата, чтобы свободные концы свисали.
Попросить санитарку завязать их сзади не касаясь халата и рук медсестры.
Надеть стерильные перчатки.
Накрытие стерильного стола
Стерильность изделий сохраняется в течение 6 часов.
Последовательность действий:
Обработать стол дезинфектантом двукратно, дать высохнуть.
Обработать руки на хирургическом уровне.
Надеть стерильный халат.
Извлечь из коробки руками в стерильных перчатках ( или без перчаток) простыню и накрыть ею стол в два слоя . чтобы её края свисали наружу с трех сторон на 15-20 см.
Извлечь из бикса вторую простыню и накрыть ею четырьмя слоями предыдущую так, чтобы края её были выше на 3-5 см.
Захватить стерильными цапками два верхних слоя спереди, сзади- все слои (6 слоёв).
Отвернуть край простыни от себя и уложить волной на задней поверхности стола.
Разложить стерильные инструменты и перевязочный материал стерильным корнцангом.
Прикрепить бирку к правой цапке, указав дату, время накрытия стола и подпись медсестры.
Накрытие стерильного лотка.
Стерильность изделия сохраняется в течение 2 часов.
Последовательность действий:
Обработать руки на гигиеническом уровне.
Извлечь стерильным корнцангом со стерильного стола или из сухожарового шкафа лоток на рабочий стол.
Поместить в лоток со стерильного стола (или из КФ, КС) четырёхслойную салфетку.
Захватить стерильными цапками два верхних слоя салфетки.
Положить под два верхних слоя салфетки пинцет, перевязочный материал.
Прикрепить бирку к правой цапке, указав дату, время накрытие лотка и фамилию медсестры.
Воздушный метод стерилизации.
При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является горячий воздух, до температуры 160-180 ;стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах (сухожаровых шкафах).воздушным методом стерилизуют изделия из метала и стекла: хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов. Нельзя стерилизовать хлопчатобумажные, синтетические ткани и резиновые изделия.
Перед стерилизацией воздушным методом изделия после ПСО обязательно высушивают в сушительном шкафу при температуре 80-85 С до исчезновения видимой влаги. Стерилизацию проводят в упаковке из стерильной бумаги и без упаковки (в открытом виде).
Загрузку и выгрузку из воздушных стерилизаторов желательно производить при температуре в камере 40-50 С.
Стерилизация воздушным методом (сухим горячим воздухом)
Наимено - вание объекта | Режим стерилизации | Химический контроль | Применяе- мое оборудование | Вид упаковочно-го материала | |
Температура, С | Время выдержки, мин. | Термоиндикаторные ленты ИС-180 | Воздушный стерилизатор - сухожаровой шкаф | Крафт- пакет, бумага мешочная влагопрочная, двухслойная упаковка из крепированной бумаги для мед. целей | |
Изделие из металла, стекла и силиконовой резины | 180 | 60 |
Примечание:
Стерилизации подвергают сухие изделия;
Изделия, простерилизованные в крафт- пакете, упаковке из бумаги мешочной влагопрочной, хранят трое суток, в 2-слойной упаковке из бумаги крепированной для медицинских целей – до 20 суток.
Изделия, простерилизованные без упаковки, должны быть в течении рабочей смены (6 часов) в асептических условиях.
Во время стерилизации воздушным методом металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде.
Повторное использование упаковок.
Стерилизационные коробки без фильтров и текстиль используют для упаковки многократно при сохранении целостности и отсутствии деформации и поломок.
Стерилизационные коробки с бактериальными фильтрами используют многократно, срок использования фильтра 1 месяц при 1-2 стерилизации в день. При замене фильтра используют следующие материалы: фильтродиагональ в 1 слой ; мадаполам, миткаль, бязь объёмная в 2 слоя. При несвоевременности смены фильтров бикс (КФ) используют в режиме бикса (КС).
Кратность использования упаковочных бумаг: пергамента – 2 раза, бумаги упаковочной высокопрочной (крафт) – 3 раза; бумаги двухслойной крепированной – 2 раза, комбинированные упаковки – однократно.
Гласперленовый метод стерилизации.
Стерилизуют цельнометаллические стоматологические, косметологические инструменты, погружая их в среду стеклянных шариков, нагретых до 190-250 С. Время обработки указано в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора.
Химическая стерилизация.
Стерилизация растворами химических препаратов.
Это вспомогательный метод, поскольку изделие нельзя простерилизовать в упаковке , а по окончанию стерилизации их необходимо промыть стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9% раствора натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному микробному обсеменению изделия.
Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы, не позволяющие использовать физические методы стерилизации. Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химических средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия. Для изделий часто используют растворы химических средств комнатной температуры, поэтому способ иногда называют «холодным».
При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью.
Препарат | Режим стерилизации | Вид изделия, рекомендуемых к стерилизации данным методом | Условия проведения стерилизации | |||
Темпер- Тура, С | Концент- рация рабочего раствора % | Экспозиция, мин. | ||||
перекись водорода | 18 | 6.0 | 360 | Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы),стекла | Полное погружение изделия в раствор | |
50 | 6,0 | 180 | ||||
Глутарал, Глутарал-Н | 50 | 6,0 | 180 | Инструменты из металлов | (с заполнением каналов и полостей) на время стерилизационной выдержки | |
21 | Применяют без разведения | 240 | ||||
Лизоформин 3000 | 40-50 | 8 | 600 | Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч эндоскопы и инструменты к ним | ||
60 | Изделия мед. назначения (вкл. эндоксины) | |||||
Бианол | 21 | 20 | 600 | Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч эндоскопы и инструменты к ним | ||
Анолит | не менее 18 | 0,02 -0,05 | 15-300 | Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, металлов, в т.ч эндоскопы и инструменты к ним |
Стерилизацию проводят при полном погружении сухих изделий в раствор, разъёмных – в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.
После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов),удаляют из полостей и каналов, а затем промывают дважды в стерильной жидкости, выдерживая экспозицию по 5 минут (согласно рекомендации методического документа по применению конкретного средства). Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости используют сразу по назначению или помещают с помощью стерильных пинцетов, корнцангов на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простынёй, на срок не более 3 суток.
Примечание:
Стерилизацию проводят при полном погружении изделия в раствор в течение всей экспозиции, затем изделия промывают стерильной водой, высушивают стерильными салфетками. Срок хранения стерильного изделия в стерилизационной коробке (КС), двухслойной бязевой упаковке -3 суток, в стерилизационной коробке (КФ) – 20 суток, на стерильном столе – 6 часов, на стерильном лотке – 2 часа.
Стерилизация эндохирургического инструмента имеет свои особенности. Эндоскопы сконструированы с применением металла, стекла и оптического стекла; изделия дороги и требуют бережного обращения. Стерилизация физическим методом (воздушная, паровая)
Выводит инструмент из строя. Альтернативу такой стерилизации составляет химическая с применением современных средств.
Стерилизация
эндохирургического инструментария
Наименование препарата | Срок использования препарата после разведения | Предварительный этап | Экспозиция 40-50 С | Завершающий этап |
НУ - Сайдекс 0,35% | 24ч | Отмыть от дезинфицирующего Агента, обессолить, подсушить | 10 мин | Промыть в стерильной воде двукратно в 2 емкостях выложить в стерильную емкость |
Лизафин 3000, 8% | Однократно | То же | 60 мин | То же |
Бианол 20% | Однократно | То же | 10 час 21 С | То же |
Промышленные виды стерилизации – газовая и радиационная.
Стерилизация позволяет обрабатывать термолабильные изделия одноразового пользования, шовный материал, оптические системы, лекарственные препараты.
Обязательные условия сохранения стерильности одноразовых изделий медицинского назначения:
Герметичность упаковки
Целостность упаковки
Срок годности
Газовый метод стерилизации (низкотемпературная стерилизация)
Для низкотемпературной стерилизации используют этиленоксид. Газовая стерилизация подходит для большинства изделий медицинского назначения, чувствительных к воздействию температурного фактора и влаги: имплантируемых изделий, включая искусственные водители ритма, изделия из пластмассы (шприцы, капельные системы), резины (катетеры, перчатки), оптические системы. Такая стерилизация безопасна для персонала и окружающей среды, экономически оправдана.
Рационный метод
Рационный метод необходим для стерилизации изделий термолабильных материалов, биологических (вакцин, сывороток) и лекарственных препаратов. Стерилизующим агентом является гамма- и бета- излучения.
Контроль качества стерилизации
Контроль позволяет улучшить качество стилизации в ЛПУ. За качеством стерилизации в лечебных учреждениях ведут тройной контроль стерильности – бактериологический, технический, химический.
Технический контроль проводят сотрудники ЦСО, осуществляющие наблюдение за показаниями приборов – манометра и термометра.
Бактериологический контроль – самый точный и строгий, но результат будет получен через несколько дней.
Химический контроль осуществляют с помощью различных химических веществ, которые меняют свой цвет при определённом температурном режиме.
Повседневный текущий контроль осуществляется с помощью лент- индикаторов стерильности (ИС), предназначенных для контроля за соблюдением температурного и временного режимов стерилизации.
По окончанию стерилизации цвет индикаторного слоя становится таким, как у прилагаемого эталона, или темнее. Если цвет индикатора светлее эталона, это указывает на эффективность стерилизации.
Выделяют 6 классов химических индикатора в зависимости от их реакции на один, несколько и на все критические параметры процесса стерилизации.
Класс | Цель применения | Воздействие на процесс стерилизации |
1 | Индикаторы процесса | Индикаторы используются на внешней поверхности отдельных упаковок, на стерилизационных коробках или свёртках со стерилизуемыми изделиями. Индикаторы свидетельствуют только о том, что изделия подвергались стерилизации (индикаторная лента стерилизация –ИС) |
2 | Индикаторы специального теста работы стерилизатора | Индикаторы позволяют оценить проникновение пара внутрь упаковки (например, тест Бови – Дика) |
3 | Индикаторы одного параметра | Индикаторы реагируют только на один критический параметр стерилизации (например, гидрохинон, бензойная кислота с фуксином) |
4 | Многопараметровые индикаторы | Индикаторы определяют 2 или более критических параметра стерилизации. Оптимальны для контроля внутри камеры и внутри упаковки. |
5 | Индикаторы-интеграторы | Индикаторы реагируют не только на все критические параметры стерилизации, но и показывают уровень гибель биотестов. Индикаторы- интеграторы соответствуют биологическим индикаторам и кривой биологической гибели, оптимальны для контроля внутри камеры и внутри упаковки. |
6 | Индикаторы-эмуляторы | Индикаторы реагируют, если все критические параметры достигли регламентированных значений. Принципиально строгое соответствие указанных для индикатора параметров и проводимого цикла стерилизации. |
Глоссарий терминов.
Антисептика-комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране, другом патологическом образовании или организме в целом.
Асептика-система мероприятий, направленных на предупреждение внедрения возбудителей инфекции в рану, ткани, органы, полости тела больного при хирургических операциях, перевязках, эндоскопии и других лечебных и диагностических процедур.
Бактериостатичность - свойство агентов физической, химической и биологической природы препятствовать размножению бактерий и вызывать бактериостаз.
Бактерицидность - свойство агентов физической, химической и биологической природы вызывать гибель бактерий.
Вирулицидность - способность химического вещества или физического фактора инактивировать вирусы.
Дезинфектанты- химические вещества различного происхождения, состава и назначения, вызывающие гибель или приостановку жизнедеятельности микроорганизмов.
Деконтаминация – процесс удаления или уничтожения микроорганизмов с целью обеззараживания и защиты – отчистка, дезинфекция, стерилизация.
Инвазивные процедуры – манипуляции, при которых нарушается целостность ткани, сосудов, полостей.
Инфекционный контроль – система организационных, профилактических и эпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения инфекционных заболеваний в стационаре, и базирующаяся на результатах эпидемиологической диагностике.
Инфицирование (инфекция) - проникновение патогенных микроорганизмов – возбудителей заболевания в человеческом организме.
Контаминация – обсеменение.
Очистка – удаление всех патогенных материалов.
Патоген - инфекционный агент способный вызвать заболевания у человека.
Споры – форма размножения некоторых низших организмов, например грибов; формы спор принимают некоторые бактерии, резистентные к высыханию, к высоким температурам и химическим веществам.
Стерильное поле – рабочее пространство, свободное от микроорганизмов на котором находится только стерильные предметы.
Стерилянты – химические вещества различного происхождения и состава, вызывающие гибель всех микроорганизмов, в том числе бактериальных спор.
Самостоятельная работа
Контрольные вопросы:
Структура ЦСО.
Цели и этапы предстерилизационной очистки.
Контроль качества предстерилизационной очистки.
Состав моющего раствора.
Средства предстерилизационной очистки.
Предстерилизационная очистка в сочетание с ультразвуком.
Виды и методы стерилизации.
Паровой метод стерилизации.
Основной режим паровой стерилизации.
Щадящий режим паровой стерилизации.
Виды укладок стерилизационных коробок.
Воздушный метод стерилизации.
Стерилизация растворами химических средств.
Контроль качества стерилизации.
Газовая стерилизация.
Радиационная стерилизация.
Приложение
ПЕРЕЧЕНЬ ИНСТРУКТИВНО-МЕТОДИЧЕСКИХ ДОКУМЕНТОВ ОТРАЖАЮЩИХ ВОПРОСЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ, ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ И СТЕРИЛИЗАЦИИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ.
1. ОСТ 42-21-2-85 "Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы".
2. Приказ Минздрава СССР от 12 июля 1989 г. № 408 "О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране".
3. Приказ Минздрава России от 16 июня 1997 г. № 184 "06 утверждении Методических указаний по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов и инструментов к ним, используемых в лечебно-профилактических учреждениях"
4. Методические указания по классификации очагов туберкулезной инфекции, проведению и контролю качества дезинфекционных мероприятий при туберкулезе ((№ 10-8/39 от 04.05.79г.).
5. Методические рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации медицинских инструментов к гибким эндоскопам № 28-6/3 от 09.02.88г.)
6. Методические рекомендации по очистке, дезинфекции и стерилизации эндоскопов (№ 15-6/33 от 17.07.90г.).
7. Методические рекомендации по стерилизации лигатурного шовного материала в лечебно-профилактических учреждениях (№ 15-6/34 от 19.07.90г..).
8. Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов (№ 15/6-5 от 28.02.91г.).
9. Методические указания по применению озона, вырабатываемого в стерилизаторе озоновом СО-01-С-П6., для стерилизации медицинских инструментов (№МУ-135-113 от 31.07.97г..).
10. Методические рекомендации по стерилизации аппаратов искусственного кровообращения газообразной окисью этилена (№ 1013-73 от 26.03.72г.).
11. Методические указания по применению медицинских упаковочных материалов корпорации "РЕКСАМ" (Великобритания) (№ МУ-204-113 от 29.12.97г.).
12. Методические указания по применению медицинских упаковочных материалов "СТЕРИКИНГ" фирмы "Випак Медикал" (Финляндия) (№ МУ-157-113 от 10.08.98г.).
13. Инструкция по применению индикаторов стерилизации одноразового применения ИС-120, ИС-132, ИС-160. ИС-180 (№ 154.004.98ИП от 18.02.98г.).
МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ ПРИ РАБОТЕ С ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИМИ, МОЮЩИМИ И СТЕРИЛИЗУЮЩИМИ СРЕДСТВАМИ
1. К работе со средствами не допускаются лица, моложе 15 лет, страдающие аллергическими заболеваниями, беременные женщины и кормящие матери.
2. Приготовление рабочих растворов средств, дезинфекцию, предстерилизационную очистку и стерилизацию изделий медицинского назначения проводят в специальном помещении с естественной или искусственной приточно-вытяжной вентиляцией.
3. Емкости с рабочими растворами в процессе обработки должны быть плотно закрыты крышками. Все работы со средствами выполнять в резиновых перчатках.
4. Если в Методических указаниях по применений средства имеются рекомендации по защите органов дыхания респираторами (РУ-60М или РПГ-68) - следует неукоснительно их соблюдать.
5. После окончания работ со средствами помещение проветрить.
6. Хранить средства в отдельном помещении, в прохладном месте, закрытыми в шкафу отдельно от лекарственных препаратов, в местах, недоступных детям.
Схемы приготовления дезинфицирующих растворов используемых в ЛПУ.
ХЛОРАМИН.
Концентрация рабочего раствора. | Экспозиция. | Количество препарата в граммах | |
на 1 л | на 10 л | ||
3% раствор для мед инструментария многократного применения, защитной одежды | 1 ч | 30,0г | 300,0г |
5% раствор для мед инструментария однократного применения, сделанного из пластмассы и в противотуберкулёзноом диспансере для мединструментария и защитной одежды. | 1 ч
2 ч |
50,0г |
500,0г |
ВИРКОН.
Концентрация рабочего раствора | Экспозиция | Приготовление | |||||||||
На 1 л | На 10 л | ||||||||||
2% раствор изделий мед назначения из металла и пластмассы | 12 мин 30 мин | 20,0г | 200,0 | ||||||||
Примечание: Виркон не действует на возбудителя туберкулёза.
ПРЕСЕПТ. | |||||||||||
Концентрация рабочего раствора. | Экспози- Ция | Количество таблеток Пресепта, необходимое для приготовление 5л рабочего раствора, при содержании в 1 таблетке натриевой соли дихлоризоциануровой кислоты. | |||||||||
0,5г | 2,5г | 5,0г | |||||||||
0,056% для дезинфекции мединструментария, в т. ч. и однократного применения, защитной одежды. | 90 мин | 10 | 2 | 1 | |||||||
0,28% в противотуберкулёзном диспансере. | 45 мин | 50 | 10 | 5 |
САЙДЕКС
(приготовленный раствор, перед использованием в раствор добавляется активатор, согласно инструкции).
| Дезинфекция. |
| |
Изделия мед назначения | При бактериальной и вирусной этиологии | При туберкулёзной этиологии. | Стерилизация |
15 мин | 90 мин | 10 ч |
ЛИЗОФОРМИН – 3000
Концентрация рабочего раствора. | Экспозиция | Количеств компонентов, необходимое для приготовления 1 л рабочего раствора. | |
Препарат, мл | Вода, мл | ||
2%раствор изделия мед назначения, включая гибкие эндоскпоы. | 15 мин | 20,0 | 980,0 |
2% раствор в турбдиспансерах | 60 мин | 20,0 | 98,0 |
САНИФЕКТ – 128
Концентрация рабочего раствора | Экспозиция | Приготовление | |
На 1 л | На 10 л | ||
2,3% раствор изделия мед назначения, защитная одежда, изделия из пластмассы. | 30 мин | 23 г | 230 г |
2,3% раствор в турбдиспансерах | 60 мин | 23 г | 230 г |
Тесты
№ 68
* 1 -один правильный ответ
Продолжительность мытья рук после любой манипуляции
1) 5 мин
2) 1 мин
3) 30 сек
4) 15 сек
! 4
№ 69
* 1 -один правильный ответ
Дез. раствор для генеральной уборки операционной
1) 6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства
2) 5% раствор хлорамина
3) 1% раствор хлорамина
4) 0,1% раствор дезоксона
! 1
№ 70
* 1 -один правильный ответ
Время, необходимое для дезинфекции 5% раствором хлорамина предметов, с которыми контактировал туберкулезный больной (в минутах)
1) 240
2) 120
3) 60
4) 30
! 1
№ 71
* 1 -один правильный ответ
Режим стерилизации шприцев и игл в автоклаве
1) Т=120 мин. t=100 град. С Р=1,1 атм.
2) Т=60 мин. t=180 град. С Р=2 атм.
3) Т=45 мин. t=140 град. С Р=1 атм.
4) Т=20 мин. t=132 град. С Р=2 атм.
! 4
№ 72
* 1 -один правильный ответ
Обработка кожи при попадании на нее ВИЧ-инфицированного материала производится
1) 6% раствором перекиси водорода
2) 3% раствором перекиси водорода
3) 70 град. спиртом
4) 96 град. Спиртом
! 3
№ 73
* 1 -один правильный ответ
Раствор для дезинфекции полов при анаэробной инфекции
1) 10% хлорной извести
2) 6% перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства
3) 6% перекиси водорода
4) 3% хлорамина
! 2
№ 74
* 1 -один правильный ответ
Дезинфекция использованного перевязочного материала, зараженного ВИЧ-инфекцией
1) 10% осветленный раствор хлорной извести — 2 часа
2) 10% раствор хлорамина — 60 минут
3) 3% раствор хлорамина на 60 минут
4) 1% раствор хлорамина — 60 минут
! 1
№ 75
* 1 -один правильный ответ
Раствор хлорамина, применяемый для дезинфекции мед. инструментов, находившихся в контакте с больными гепатитом
1) 10%
2) 5%
3) 3%
4) 1%
! 3
№ 76
* 1 -один правильный ответ
Режим стерилизации перчаток в автоклаве
1) давление 2 атм., время 10 мин
2) давление 2 атм., 45 мин
3) давление 1,1 атм., 45 мин
4) давление 0,5 атм., 20 мин
! 3
№ 77
* 1 -один правильный ответ
Раствор для дезинфекции помещений после обработки педикулезного пациента
1) 6% перекиси водорода, 1% дезоксона
2) 3% хлорной извести, 3% хлорамина
3) 1% хлорной извести, 1% хлорамина
4) 0,15% карбофоса, 0,5% хлорофоса
! 4
№ 78
* 1 -один правильный ответ
Для приготовления 1 л моющего раствора для предстерилизационной обработки инструментария необходимо растворить
1) 5 г порошка «Биолот» в 995 мл воды
2) 5 г любого порошка в 995 мл воды
3) 5 г порошка «Биолот» в 1 л воды
4) 10 г любого порошка в 990 мл воды
! 1
№ 79
* 1 -один правильный ответ
Дезинфекция столовой посуды больных инфекционным гепатитом проводится с момента закипания в течение (в минутах)
1) 45 в воде
2) 30 в воде
3) 15 в воде
4) 15 в 2% растворе соды
! 4
№ 80
* 1 -один правильный ответ
Длительность погружения шприцев и систем одноразового использования в хлорсодержащий дезинфицирующий раствор (в минутах)
1) 120
2) 60
3) 45
4) 15
! 2
№ 81
* 1 -один правильный ответ
Устройство для стерилизации перевязочного материала
1) термостат
2) автоклав
3) сухожаровой шкаф
4) дезинфекционная камера
! 2
№ 82
* 1 -один правильный ответ
Дезраствор для генеральной уборки операционной — раствор
1) 6% хлорамина
2) 3% перекиси водорода с 0,5% моющего средства
3) 3% хлорамина
4) 1% хлорамина
! 1
№ 83
* 1 -один правильный ответ
Срок годности осветленного раствора хлорной извести (в днях)
1) 45
2) 30
3) 14
4) 7
! 4
№ 84
* 1 -один правильный ответ
Дез. средство для обработки мединструментов после контакта с анаэробной инфекцией
1) 6% раствор перекиси водорода с 0,5% раствором моющим раствором
2) 3% раствор хлорамина
3) карболовая кислота
4) раствор формалина
! 1
№ 85
* 1 -один правильный ответ
Раствор хлорамина для дезинфекции желудочных зондов и мочевых катетеров
1) 10%
2) 3%
3) 1%
4) 0,5%
! 2
№ 86
* 1 -один правильный ответ
Генеральную уборку операционного блока и перевязочных проводят
1) 2 раза в месяц
2) 1 раз в месяц
3) 1 раз в неделю
4) 1 раз в день
! 3
№ 87
* 1 -один правильный ответ
Возможный путь передачи ВИЧ-инфекции
1) прием пищи из одной посуды
2) уксусы насекомых
3) рукопожатие
4) переливание инфицированной крови
! 4
№ 88
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция для дезинфекции вирконом изделий медицинского назначения из резины (в минутах)
1) 360
2) 60
3) 30
4) 10
! 3
№ 89
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция при дезинфекции кипячением в дистиллированной воде предметов многоразового использования (в минутах)
1) 90
2) 60
3) 30
4) 15
! 3
№ 90
* 1 -один правильный ответ
Раствор хлорамина для дезинфекции клизменных наконечников
1) 6%
2) 5%
3) 3%
4) 1%
! 3
№ 91
* 1 -один правильный ответ
Раствор для обработки слизистых оболочек при попадании биологической жидкости инфицированного пациента
1) 6% перекиси водорода, раствор перманганата калия
2) 3% перекиси водорода, 96 град. спирт
3) 3% перекиси водорода, проточная вода
4) 0,05% перманганата калия, 70 град. спирт
! 4
№ 92
* 1 -один правильный ответ
Количество сухой хлорной извести, необходимое для приготовления 10 л осветленного 10% раствора (в граммах)
1) 1000
2) 500
3) 300
4) 100
! 1
№ 93
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция при дезинфекции вирконом изделий мед. назначения из металла (в минутах)
1) 360
2) 60
3) 30
4) 10
! 4
№ 94
* 1 -один правильный ответ
Раствор для обработки тапочек больного грибковым заболеванием стоп
1) 25% формалина, укладка в полиэтиленовый мешок на 3 часа
2) 10% уксуса
3) 3% хлорамина, протирание снаружи и изнутри
4) 1% хлорамина, протирание
! 1
№ 95
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция при дезинфекции 3% раствором хлорамина мед. инструментария многоразового использования по ОСТу 42-21-2-85 (в минутах)
1) 90
2) 60
3) 30
4) 15
! 2
№ 96
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция при дезинфекции 1% раствором хлорамина медицинских термометров (в минутах)
1) 60
2) 45
3) 30
4) 15
! 4
№ 97
* 1 -один правильный ответ
Осветленный раствор хлорной извести для дезинфекции подкладного судна, мочеприемника
1) 10%
2) 5%
3) 3%
4) 1%
! 4
№ 98
* 1 -один правильный ответ
Для контроля температуры в воздушном стерилизаторе применяют
1) азопирам
2) бензойную кислоту
3) янтарную кислоту
4) тиомочевину
! 4
№ 99
* 1 -один правильный ответ
Количество сухого хлорамина, необходимое для приготовления 1л 1% раствора (в граммах)
1) 100
2) 50
3) 30
4) 10
№ 101
* 1 -один правильный ответ
Уничтожение в окружающей среде патогенных микроорганизмов
1) дезинсекция
2) стерилизация
3) дезинфекция
4) дератизация
! 3
№ 102
* 1 -один правильный ответ
Для стерилизации инструментов применяют раствор перекиси водорода
1) 33%
2) 6%
3) 4%
4) 3%
! 2
№ 103
* 1 -один правильный ответ
Дезинфекция ножниц, бритвенных приборов
1) погружение в 70 град. спирт на 30 минут
2) погружение в 1% раствор хлорамина на 1 час, ополаскивание водой
3) протирание 96 град. спиртом
4) кипячение 30 минут в воде
! 1
№ 104
* 1 -один правильный ответ
Дезинфекция матраца, одеяла, подушки после выписки пациента
1) замачивание в 3 % растворе хлорамина
2) кипячение
3) обеззараживание в дез. камере
4) проветривание
! 3
№ 105
* 1 -один правильный ответ
Экспозиция при стерилизации инструментов 6% раствором перекиси водорода комнатной температуры (в минутах)
1) 360
2) 240
3) 60
4) 30
! 1
АЛГОРИТМЫ МАНИПУЛЯЦИЙ ПО ОСНОВАМ СЕСТРИНСКОГО ДЕЛА
ОБРАБОТКА РУК ДО И ПОСЛЕ ЛЮБОЙ МАНИПУЛЯЦИИ № 7/33
Цель: Обеспечить инфекционную безопасность пациента и медперсонала, профилактику внутрибольничной инфекции.
Показания:
1. Перед и после выполнения манипуляции.
2. Перед и после осмотра пациента.
3. Перед едой.
4. После посещения туалета.
5. После надевания и после снятия перчаток.
Противопоказания: Нет
Оснащение:
1. Мыло разовое.
2. Индивидуальное сухое полотенце.
3. Перчатки
4. Дезинфицирующее средство: этиловый спирт 70 градусный или другое, предложенное учреждением в соответствии с нормативными документами (АХД - 2000, АХД - специаль и др.).
Последовательность действий медсестры с обеспечением безопасности окружающей среды:
1. Откройте кран и отрегулируйте капор воды,
2. Вымойте барашки крана.
3. Намыльте руки мылом, начиная с запястья.
4. Мойте правую ладонь левой, а затем левую правой.
5. Мойте межпальцевые промежутки тыльной стороны левой руки правой рукой и наоборот.
6. Сделайте замок из пальцев с ладонной стороны и потрите их, моя ногтевые ложа.
7. Потрите круговыми движениями каждый палец на левой руки, затем на правой.
8. Ополосните руки теплой проточной водой, начиная с запястья.
9. Закройте кран.
10. Высушите руки индивидуальным или разовым полотенцем, начиная с кончиков пальцев.
11. Выбросите использованное разовое полотенца.
12. Наденьте чистые перчатки, если этого требует манипуляция.
Оценка достигнутых результатов: Руки вымыты и готовы к манипуляциям.
Примечания.
1. Руки моют двукратным намыливанием.
2. Если нужно проводить инвазивные процедуры, то руки сразу после мытья обрабатывают одним из дезинфицирующих средств (70% этиловый спирт, АХД 2000, АХД 2000 специаль) и одевают перчатки.
ПРИГОТОВЛЕНИЕ МОЮЩИХ И ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИХ
РАСТВОРОВ РАЗНОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ № 8/35
Цель: Приготовить 10% раствор хлорной извести.
Показания. Для дезинфекции.
Противопоказания: Аллергическая реакция на хлорсодержащие препараты.
Оснащение:
1. Длинный хирургический халат.
2. Резиновый фартук.
3. Респиратор (или 8-слойная маска).
4. Очки.
5. Шапочка.
6. Резиновые перчатки.
7. Весы или мерная емкость.
8. Сухая хлорная известь 1 кг.
9. Эмалированная емкость с крышкой.
10. Бутыль из темного стекла с притертой пробкой.
11. Деревянная лопатка.
12. Этикетка.
13. Холодная вода -10 литров.
14. Марлевая салфетка или сито.
Последовательность действий медсестры с обеспечением безопасности окружающей среды:
1. Наденьте второй халат, клеенчатый фартук, резиновые перчатки, респиратор или восьмислойную маску.
2. Возьмите 1 килограмм сухой хлорной извести
3. Высыпьте ее осторожно в эмалированную емкость, измельчите ее деревянной лопаткой.
4. Перемешайте все и осторожно вливайте холодную воду до отметки 10 литров.
5. Закройте крышкой и поставьте на 24 часа (в течение этого времени несколько раз перемешайте) для выделения активного хлора, получится маточный раствор.
6. Перелейте через 24 часа полученный раствор через 4 слоя бинта (марли) в бутыль из темного стекла с маркировкой "10% раствор хлорной извести".
7. Закройте пробкой.
8. Поставьте на этикетке дату приготовления раствора, его концентрацию, свою должность и фамилию.
9. Снимите защитную одежду.
10. Вымойте руки с мылом.
Примечание:
1. Хлорсодержащие растворы готовят в специальном помещении с хорошей вентиляцией.
2. 10% раствор можно хранить 5-7 суток в темном месте.
3. Раствор необходимо хранить в недоступном для пациента месте.
Приготовление рабочих растворов хлорной извести:
1. 0.5% - 500 мл 10% раствора хлорной извести на 9,5 литра воды;
2. 1% - 1 литр 10% раствора хлорной извести на 9 литра воды;
3. 2% - 2литра 10% раствора хлорной извести на 8 литра воды;
Формула приготовления хлорной извести:
4. Y = (% кол-во литров). Y - количество осветленного раствора хлорной извести.
Рабочий раствор хлорамина (готовится перед применением)
5. 1% -10 г хлорамина на 990 мл воды;
6. 2% - 20 г хлорамина на 980 мл воды;
7. 3% - 30 г хлорамина на 970 мл воды;
8. 5% - 50 г хлорамина на 950 мл воды.
ПРОВЕДЕНИЕ ВЛАЖНОЙ УБОРКИ ПОМЕЩЕНИЯ ЛПУ
С ПРИМЕНЕНИЕМ ДЕЗИНФЕЦИРУЮЩИХ РАСТВОРОВ № 10/37
Цель: Провести генеральную уборку процедурного кабинета.
Показания: В соответствии с графиком (один раз в неделю).
Противопоказания: Нет.
Оснащение:
1. Халат с маркировкой "для уборки".
2. Перчатки.
3. Маска.
4. Уборочный инвентарь (ведро, швабра, тряпка, ветошь) с соответствующей маркировкой.
5. Дезинфицирующий и моющий раствор (приготовленный в соответствии с действующими нормативными документами по СЭР).
Последовательность действий:
1. Наденьте халат, перчатки, маску и наденьте удобную обувь.
2. Приготовьте 10 л 0,5% моющего средства (50г CMC на 10 л воды).
3. Приготовьте 10 л 1% хлорамина и добавьте 40 мл нашатырного спирта (для активизации хлора).
4. Освободите максимально помещение от оборудования.
5. Вымойте стены, пол моющим раствором.
6. Вымойте стены, пол, плинтуса 1% раствором активированного хлорамина.
7. Протрите через час стены и пол чистой, сухой ветошью.
8. Занесите УФ свет на 2 часа.
9. Замочите уборочный инвентарь в 1% растворе хлорамина на 60 минут (в том же ведре, которое использовали для уборки), прополощите и высушите.
10. Снимите халат, перчатки, маску.
11. Вымойте руки.
Оценка результата: Генеральная уборка проведена в соответствии с приказом №408, 720. ОСТ 42-21-2-85.
Примечания:
1. Уборка палат производится не реже 2 раз с применением 0,5% раствора, моющего средства.
2. Уборка помещений буфетной и столовой производится после каждой раздачи пищи.
Предварительный просмотр:
ОСТ- 42-21-2-85 г.
"Стерилизация и дезинфекция изделий
медицинского назначения"
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
N Вопросы Ответы
п/п
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1 2 3
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1. Какова должна быть температура 1. 20°
моющего раствора для 2. 40°
предстерилизационной обработки 3. 50°
медицинского инструментария? 4. 70°
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
2. Какая концентрация перекиси водорода 1. 0,5%
должна быть в приготовленном моющем 2. 1%
растворе? 3. 3%
4. 6%
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
3. Сколько берется моющего средства 1. 1,5 гр.
"Лотос" для приготовления 1-го литра 2. 3 гр.
моющего раствора при механизированной 3. 5 гр.
/струйный метод, ершевание, 4. 10 гр.
использование ультразвука/ и ручной
очистке мединструментария?
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
4. Какая требуется экспозиция 1. 10 мин.
замачивания мединструментария в моющем 2. 15 мин.
растворе при предстерилизационной 3. 30 мин.
обработке? 4. 45 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
5. Укажите оптимальный режим 1. 120° - 30 мин.
стерилизации при паровом методе 2. 132° - 20 мин.
рекомендуемый для изделий из резины, 3. 120° - 45 мин.
латекса и отдельных полимерных 4. 132° - 45 мин.
материалов.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
6. Укажите оптимальный режим 1. 160° - 60 мин.
стерилизации при воздушном методе, 2. 160° - 120 мин.
рекомендуемый для изделий из металла, 3. 180° - 60 мин.
стекла и силиконовой резины? 4. 180° - 120 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
7. Укажите время выдержки при паровом 1. 20 мин.
методе стерилизации в режиме 132°? 2. 30 мин.
3. 45 мин.
4. 60 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
8. Укажите необходимое время выдержки 1. 45 мин.
при стерилизации 6% перекисью водорода 2. 120 мин.
при температуре 50°? 3. 180 мин.
4. 360 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
9. Укажите режим дезинфекции 1. 1% р-р - 30 мин.
мединструментария хлорамином при 2. 3% р-р - 60 мин.
гепатите "Б" 3. 3% р-р - 90 мин.
4. 5% р-р - 45 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
10. Укажите режим дезинфекции 1. 3% р-р - 360 мин.
медицинского инструментария хлорамином 2. 5% р-р - 120 мин.
при туберкулезе? 3. 5% р-р - 180 мин.
4. 5% р-р - 240 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
11. Какой режим дезинфекции 1. 1% р-р - 30 мин.
мединструментария хлорамином применяется 2. 1% р-р - 60 мин.
при гнойных заболеваниях и др. инфекциях 3. 3% р-р - 30 мин.
бактериальной и вирусной этиологии? 4. 3% р-р - 90 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
ОСТ - 42-21-2-85
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
п/п Вопросы Ответы
(правильное подчеркнуть)
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1 2 3
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1. Какова должна быть температура 1. 25°
моющего раствора для 2. 40°
предстерилизационной обработки 3. 50°
медицинского инструментария. 4. 70°
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
2. Для приготовления 1 литра моющего
раствора какое количество необходимо
взять:
а) моющего средства? а) - 5 гр
- 10 гр
- 25 гр
б) пергидроля (27,5%)? б) - 10 гр
- 17 гр
- 30 гр
в) воды дистиллированной? в) - 945
- 780
- 978
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
3. Укажите оптимальный режим
стерилизации:
а) при паровом методе а) 132° - 20 мин.
132° - 45 мин.
120° - 45 мин.
120° - 30 мин.
б) при воздушном методе б) 180° - 120 мин.
180° - 60 мин.
160° - 150 мин.
160° - 120 мин.
в) при химическом методе в) 18° - 240 мин.
перекисью водорода (6%) 18° - 360 мин.
50° - 180 мин.
50° - 120 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
4. Укажите режим дезинфекции 1. 6% - 45 мин.
медицинского инструментария хлорамином 2. 3% - 90 мин.
при гепатите "В"? 3. 3% - 60 мин.
4. 1% - 30 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
5. Укажите режим дезинфекции 1. 5% - 180 мин.
медицинского инструментария хлорамином 2. 3% - 360 мин.
при туберкулезе? 3. 5% - 240 мин.
4. 5% - 120 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
6. Какова экспозиция при замачивании 1. 10 мин.
мединструментария в моющем растворе при 2. 15 мин.
предстерилизационной обработке? 3. 25 мин.
4. 30 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
7. Какой режим дезинфекции хлорамином 1. 1,0% - 60 мин.
мединструментария применяется при 2. 1,0% - 30 мин.
гнойных заболеваниях и др. инфекциях 3. 3% - 30 мин.
бактериальной и вирусной этиологии? 4. 3% - 90 мин.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
Приказ МЗ СССР N 720 от 31.07.78 г.
"Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными
хирургическими заболеваниями и усилении
мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией"
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
п/п Вопросы Ответы
(правильное подчеркнуть)
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1 2 3
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
1. Где проводится обследование больных, 1. в больничных условиях
госпитализируемых для плановых операций. 2. в поликлинических условиях
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
2. Смена нательного и постельного белья 1. 1 раз в 10 дней и по мере
в стационарах. необходимости
2. 1 раз в 7 дней и по мере
необходимости
3. по требованию больного
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
3. Что предусматривает правило "красной 1. не допускать посторонних в
черты"? операционную
2. все входящие в операционную
должны быть одеты в
стерильное белье.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
4. Как часто и чем проводится уборка 1. 1 раз в день в 3% перекисью
палат для анаэробной инфекции? водорода и кварцеванием.
2. не реже 2 раз в день с 3%
перекисью водорода.
3. не реже 2 раз в день с 6%
перекисью водорода с 0,5%
моющим средством.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
5. Как часто и каким способом проводится 1. 1 раз в 10 дней 6%
генеральная уборка операционного блока и раствором Н2О2 и 0,5%
перевязочных? моющего средства.
2. 1 раз в неделю 6% раствором
Н2О2 и 0,5% моющего
раствора.
3. 1 раз в 7 дней 3% раствором
хлорамина и 0,5% моющего
раствора.
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
—————————————————————————————————————————————————————————————————————————
* Подробное изложение дезинфекции отдельных изделий при конкретных инфекционных заболеваниях приведено в соответствующих приказах и методических указаниях, указанных в приложении 2 настоящего ОСТ.
** Режим дезинфекции химическим методом дан в трех вариантах: 1 - должен применяться при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериальной и вирусной этиологии (грипп, аденовирусные и т.п. болезни), гибитан - только бактериальной этиологии; 2 - при туберкулезе; 3 - при вирусных гепатитах.